一、猪繁殖和呼吸综合征的诊断及防制（论文文献综述）
马铭[1]（2020）在《新疆三个规模化猪场CSF、PR、PRRS及PCV2免疫抗体的动态检测及免疫程序优化》文中研究指明目的:猪群的健康稳定是规模化猪场长远持续发展的必要条件,是保障猪群健康的主要手段之一。猪瘟（CSF）、猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）、猪伪狂犬病（PR）和猪圆环病毒相关疾病（PCVD）是目前对养殖场猪群健康造成影响的重要疾病,猪群若被感染,其死亡不但会造成一定程度的经济损失,还能够损害养殖场的进一步发展。本次实验从猪场病毒病的预防着手,为新疆三个不同地区规模化猪场提供积极有效的疫苗免疫程序,进一步为猪场构建更加完善的免疫程序奠定了一定的理论基础。方法:分析新疆三个不同地区规模化猪场猪瘟、猪伪狂犬病、猪繁殖与呼吸综合征以及猪圆环病毒的免疫水平,再通过疫苗免疫抗体的消长规律对免疫程序进行一定的调整,从而确保猪群的健康,防止疾病发生。本研究以哈密、克拉玛依、博乐的三个规模化猪场的3万余头猪为研究对象,在2019年春秋两季采用抽样调查的方法,选择不同日龄的猪血清作为样品,通过ELISA法进一步测定CSFV、PRV、PRRSV和PCV2中的免疫抗体,再通过其消长规律进一步调整相应的免疫程序。结果:1.新疆三个不同地区规模化猪场2019年全年CSFV、PRV、PRRSV以及PCV2的抗体总阳性率为83.90%、71.57%、86.17%、87.25%,均超过了国标要求70%的合格率,其中CSFV抗体阳性率最高的为A场,其次为C场、B场,PRV抗体阳性率最高为C场,其次为B场、A场,PRRSV抗体阳性率最高为A场,其次为B场、C场,PCV2抗体阳性率最高为A场,其次为B场、C场。2.2019年秋季相比较于春季,根据抗体阳性率及变异系数发现A场猪群在413周龄、B场710周龄及C场4-7周龄仔猪存在猪瘟野毒感染的风险;A、B、C三个场的能繁母猪、后备母猪及公猪等均存在PR野毒感染的风险;PRRS方面,A场秋季S/P值大于2.5的猪群较多,病毒活跃,感染风险大,B场春秋两季检测S/P值均小于2.39,维持阳性稳定状态,C场秋季10周龄后的仔猪S/P值均大于3.0,说明此阶段PRRS感染风险大;PCV2方面,A、B、C三个场的抗体阳性率及S/P值均分布均匀,免疫效果好。3.通过抗体消长规律、变异系数、感染风险分析,对各场疫苗程序进行调整,其中母猪按现有的免疫程序严格执行,仔猪按照以下程序操作:A场:0-3日龄（PR,0.5头份,滴鼻）,14日龄（PCV2+PRRS,各1头份,左右颈部肌肉注射）,23日龄（CSF,1头份,肌肉注射）,40日龄（PR,1头份,肌肉注射）,60日龄（CSF,2头份,肌肉注射）,50日龄（PR,1头份,肌肉注射）;B场:0-3日龄（PR,0.5头份,滴鼻）,14日龄（PCV2+PRRS,其中PCV2肌注1头份,PRRS肌注0.5头份）,28日龄（CSF,1头份,肌肉注射）,45日龄（PR,1头份,肌肉注射）,60日龄（CSF,1头份,肌肉注射）,70日龄（PR,1头份,肌肉注射）;C场:0-3日龄（PR,1头份,滴鼻）,14日龄（PCV2,PRRS各肌注0.5头份）,21日龄（CSF,1头份,肌肉注射）,45日龄（CSF,1头份,肌肉注射）,50日龄（PR,1头份,肌肉注射）,70日龄（PR,1头份,肌肉注射）。结论:根据试验结果对新疆三个不同地区规模化猪场猪的CSFV、PRV、PRRSV、PCV2免疫程序进行了优化,为科学免疫及综合防控奠定了理论基础。
戴鑫鑫[2]（2020）在《昌吉地区规模化猪场猪繁殖与呼吸障碍综合征的调查及分析》文中研究表明猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）是一种导致仔猪产生呼吸道疾病和母猪繁殖障碍的烈性传染病,其病原是猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）,是世界动物卫生组织（OIE）必须通报的传染病之一。该病呈现全球流行趋势,给养猪业造成巨大经济损失。目前该病防控措施效果不够理想,严重影响了养猪业的发展。新疆昌吉地区三个规模化养猪场存在PRRSV的感染,但其流行毒株特征、流行规律以及免疫防控效果尚不明确。。目的:本项研究通过现场流行病学调查、分子生物学和血清学检测,探明新疆昌吉地区三个规模化猪场PRRS疾病的发病特征和流行规律,分析免疫防控措施的应用效果,为本地区该病的防控提供理论基础。方法:（1）对昌吉地区玛纳斯县、呼图壁县、佃坝乡三个规模化猪场不同阶段的猪群采用现场流行病学调查和PCR检测,主要调查内容包括阳性率、发病季节、发病日龄、疫苗免疫现状等方面。（2）对呼图壁县规模猪场78份样品进行不同毒株PRRS病毒美洲株和类NADC-30毒株)的实时荧光定量PCR检测。（3）对三个规模化猪场免疫猪群的1316份血清样本进行ELISA抗体检测,分析疫苗免疫效果,为制定猪场免疫程序提供理论依据。结果:（1）经现场临床观察和PCR检测,三个猪场PRRS的平均确诊率为6.32%（377/5963）,其中玛纳斯县猪场为5.05%（93/1842）、佃坝乡猪场为5.45%（117/2146）和呼图壁县猪场为8.46%（167/1975）。在377份的确诊样品中夏季阳性率38.72%（146/377）和秋季阳性率24.40%（92/377）高于春季18.83%（71/377）和冬季18.03%（68/377）。保育猪发病率10.42%（197/1891）,哺乳母猪发病率4.90%（31/632）,哺乳仔猪发病率4.90%（135/2753）,繁殖母猪发病率为4.67%（14/300）。（2）荧光定量检测呼图壁猪场PRRSV阳性率3.85%（3/78）,3份阳性样品中1份样品检测出类NADC-30毒株。（3）三个猪场疫苗免疫后抗体检测阳性率为92.3%（1215/1316）。其中佃坝猪场为92.3%（454/492）,四个季度分别为春季89.80%（97/108）,夏季100%（51/51）,秋季93.60%（161/172）,冬季90.10%（145/161）;玛纳斯猪场为88.5%（379/428）,四个季度分别为春季80.40%（74/92）,夏季100%（85/85）,秋季93.00%（120/129）,冬季82.00%（100/122）;呼图壁猪场为96.46%（382/396）,春夏季为97.10%（132/136）,秋季97.90%（139/142）,冬季94.10%（111/118）;根据我国农业部2016年动物疫病免疫要求,猪蓝耳病抗体阳性率在70%以上为合格,说明三个场对猪群蓝耳病的免疫合格。其中佃坝猪场四个季度（S/P大于2.5）为14.81%（16/108）、37.25%（19/51）、20.35%（35/172）和6.83%（11/161）;玛纳斯县猪场四个季度（S/P大于2.5）为9.78%（9/92）、37.65%（32/85）、2.33%（3/129）和5.74%（7/122）;呼图壁猪场（S/P大于2.5）春夏季度为37.50%（51/136）、秋季为35.92%（51/142）和冬季为10.17%（12/118）,将PCR检测数据和ELISA数据结合分析可得知当抗体阳性率大于80%,S/P平均值在1.07至1.71之间,离散度在50以下时猪群受PRRSV感染的概率较小。结论:新疆昌吉地区3个规模化猪场均存在PRRS的感染,在各个季节呈现散发的情况。呼图壁某规模化猪场存在PRRSV美洲株和类NADC-30毒株感染,应注意加强防控。三个猪场最优的免疫程序是,母猪和种公猪使用灭活苗进行免疫,仔猪的免疫则是使用弱毒苗（JXA1-R株）。免疫程序为春秋两季普免（妊娠后期母猪禁免）,产后母猪和断奶仔猪进行一次补免。
马坚[3]（2019）在《猪繁殖与呼吸综合征病毒类NADC30毒株感染场疫苗免疫控制方案应用研究》文中研究指明猪繁殖与呼吸综合征在全球范围内广泛流行,并对我国养猪业造成了巨大损失,其主要临床表现为母猪妊娠后期流产、早产和产死胎等繁殖障碍以及仔猪的呼吸道症状。猪繁殖与呼吸综合征病毒极其容易变异,目前我国多个省份都有检出NADC30-like毒株的报道,河南省的检出率更是高达50%以上。NADC30-like毒株的感染和流行给猪繁殖与呼吸综合征的防控工作带来了更大挑战,并且针对该毒株的感染目前尚未发现很好的控制方案。本论文旨在研究猪繁殖与呼吸综合征病毒NADC30-like毒株感染场疫苗免疫控制方案。本论文的试验由两部分组成,第一部分为调查研究试验猪场的临床感染背景,并通过基因测序的手段确定为NADC30-like毒株感染场。然后从猪场挑选二胎龄及以上胎次的母猪120头,分为弱毒疫苗免疫组、灭活疫苗免疫组、弱毒疫苗和灭活疫苗联合免疫组以及不免疫组四组,对比统计四种方案中母猪的流产率、木乃伊胎和死胎数、所产活仔数,以及免疫前后抗体水平的变化。再从猪场中挑选14日龄仔猪400头并分为四组,分别为弱毒疫苗免疫组、灭活疫苗免疫组、弱毒疫苗和灭活疫苗联合免疫组以及不免疫组,对比统计四组不同免疫方案中仔猪日增重、发病率、伤亡率等,并结合免疫前后抗体水平的变化,从血清学和临床生产成绩两个方面对比研究不同疫苗免疫控制方案所达到的效果。第二部分为重新筛选试验猪场,并重复试验一中的过程,对不同疫苗免疫控制方案所达到的效果进行二次评价。试验结果显示:两个猪场八组母猪试验中弱毒疫苗和灭活疫苗联合免疫组均优于弱毒疫苗免疫组和灭活疫苗免疫组,并且联合免疫组抗体水平产生最高、速度最快,生产成绩改善最明显;两个猪场八组仔猪试验中弱毒疫苗和灭活疫苗联合免疫组均优于弱毒疫苗免疫组和灭活疫苗免疫组,并且抗体水平产生最高、速度最快,生产成绩改善最明显。试验结果表明,联合免疫弱毒疫苗及灭活疫苗是控制猪繁殖与呼吸综合征病毒NADC30-like毒株感染的有效方案。
熊立智[4]（2019）在《两种PRRSV疫苗对猪肺泡巨噬细胞相关细胞因子表达的影响》文中进行了进一步梳理PRRSV流行范围广,变异性强,国内主要流行的毒株分为两类,一类以CH-1a、VR-2332为代表经典型和以JXA1、CHSX1401为代表变异株。研究人员为了解PRRSV变异情况,依据ORF5或者NSP2基因序列建立NSP2或ORF5单重PCR方法。NSP2/ORF5单重PCR灵敏性高,但是每次只分析一个基因的序列变异情况,数据稍显单薄。本试验建立PRRSV的NSP2-ORF5双重PCR方法,一次扩增ORF5、NSP2两个基因,可以同时分析两个基因序列变异情况。参考蓝耳高致病性变异株和经典株基因序列和相关引物序列,建立了一套NSP2-ORF5双重PCR方法并初步进行临床应用。经CH-1a、JXA1-R、JEV、PEDV、TGEV、PRV、CSFV NSP2-ORF5双重PCR方法特异性结果检验,该方法特异性检验特异性良好,PRRSV cDNA检测最低浓度5.95×10-3μg/μL。用该方法检测临床样品蓝耳阳性样品（检测引物鉴定）,共鉴定8株PRRSV的ORF5序列和7株PRRSV的NSP2序列,毒株基因序列与高致病性蓝耳病毒亚群（subcluster?）遗传距离最近,基因同源性最高。本试验建立的NSP2-ORF5双重PCR方法,特异性好、灵敏性高。应用该方法能对临床样品进行NSP2和ORF5两个基因序列变异情况分析,能对PRRSV毒株变异情况进行有效的分析。目前防控PRRSV感染主要通过疫苗免疫、药物保健和生物安全等措施进行综合防控。PRRSV疫苗主要有VR-2332、CH-1a经典株和JXA1、TJM-F92等变异株疫苗,在防控PRRSV感染方面,不同毒株的PRRSV活疫苗安全性问题（免疫抑制、基因重组、排毒继发感染等）存在较大差异。本试验拟用PRRSV疫苗（经典株和变异株）体外感染PAM,用qRT-PCR检测PAM免疫相关因子mRNA表达量的变化,了解经典株PRRSV疫苗和变异株PRRSV疫苗对PAM免疫功能相关因子mRNA表达的差异。选购健康猪肺（PCR检测PRRSV、PCV2、Mhp为阴性）,用灌洗法分离纯化PAM。将PAM分为三组:空白组对照组、JXA1R-PRRSV疫苗感染组、VR2332-PRRSV疫苗感染组,每组三个重复。37℃5%CO2分别培养0 h、12 h和24h取PAM,用qRT-PCR检测免疫相关分子和细胞因子mRNA表达量效果。结果显示,PRRSV感染PAM 12 h,在VR-2332组和JXA1-R组中,IL-1α、IL-1β、IL-6、TNFα、和MHCⅡmRNA表达量相比空白组均上调,其中VR-2332组TNFα、IL-6、IL-1α和IL-1β和MHCⅡmRNA表达量高于JXA1-R组,但VR-2332组中IL-10的mRNA表达量低于JXA1-R组。PRRSV感染PAM 24 h,VR-2332组和JXA1-R组IL-1α、IL-1βmRNA表达量相比空白组仍在升高,VR-2332组TNFα、IL-10、TLR2 mRNA表达量高于JXA1-R组,但VR-2332组中IL-1α、IL-1β的mRNA表达量低于JXA1-R组。PAM体外感染PRRSV疫苗毒株试验,经典株VR2332疫苗和高致病性蓝耳JXA-1株疫苗对PAM促炎细胞因子、免疫抑制性细胞因子的mRNA转录影响有差异,高致病性蓝耳JXA-1株疫苗感染PAM,免疫相关细胞因子mRNA表达量低于经典型VR-2332株疫苗。提示经典株PRRSV对PAMs的免疫抑制高于JXA1-R。建立NSP2-ORF5双重PCR方法,对PRRSV毒株变异情况进行有效分析,为PRRSV的防控提供参考。PRRSV疫苗（经典株和变异株）体外感染PAM试验,检测PAM感染两种疫苗毒之后相关因子表达水平,了解经典株PRRSV疫苗和变异株PRRSV疫苗对PAM相关免疫功因子mRNA表达差异,为评估疫苗安全性提供参考。
于浩洋[5]（2019）在《湖南部分地区CSFV、PRRSV、PRV、PCV2血清抗体的监测》文中研究指明近年来,我国养猪业的猪病疫情变得越来越复杂,其中由猪瘟病毒（CSFV）引发的猪瘟（CSF）、猪繁殖与呼吸综合征病毒（PRRSV）引发的猪繁殖和呼吸综合征（PRRS）（又称蓝耳病）、伪狂犬病病毒（PRV）引发的猪伪狂犬病（PR）以及猪圆环病毒2型（PCV2）引发的猪圆环病毒病（PCVD）是公认影响我国养猪业健康、稳定、快速发展的重大疾病。本研究于2017年9月2018年9月对湖南省8个地市不同生长阶段的猪只进行血清学调查,以了解这三种病毒（CSFV、PRRSV以及PRV）在湖南省的流行及感染情况,并评价四种病毒（CSFV、PRRSV、PRV和PCV2）疫苗的临床免疫效果,为进一步制定更加合理、科学的防控措施提供依据。为了解湖南省CSFV、PRRSV以及PRV的血清学感染情况,对未接种CSFV疫苗的仔猪和育肥猪进行猪瘟病毒ELISA抗体检测,在检测的119份仔猪样品中（注:生产仔猪的母猪已进行过CSFV疫苗免疫）,体内的母源抗体水平随着仔猪日龄的增长逐渐下降;而在所有育肥猪中血清样本中均未发现CSFV感染。对未接种PRRSV疫苗的636份血清样本进行ELISA检测,抗体阳性率为48.1%,阳性率最高的地区为益阳,高达94.3%,常德地区阳性率最低,仅为37.4%;其中,在检测的172份仔猪样品中（注:生产仔猪的母猪已进行过PRRSV疫苗免疫）,仔猪的母源抗体水平在15-21日龄开始衰退加剧,种公猪呈现出较高的感染率（80%）,育肥猪的感染率最低（31.1%）。检测1523份血清样品中的PRV gE抗体,阳性率为22.3%,感染最严重地区为邵阳,阳性率高达48.8%,而益阳地区未出现感染;不同生长阶段猪群PRV带毒阳性率最高的为仔猪（27.4%）,最低为育肥猪（4.3%）。以上结果表明:三种病毒（CSFV、PRRSV以及PRV）在湖南省均有不同程度的感染。为了解湖南省CSFV、PRRSV、PRV和PCV2的疫苗免疫情况,对湖南省接种CSFV疫苗的1320份血清进行抗体检测,平均阳性率为82.2%,离散度为32%,其中,永州地区猪场的免疫效果较理想,CSFV抗体阳性率为96.6%,然而不同生长阶段猪只的免疫效果不均匀,公猪的阳性率最高,可达92.6%,保育猪最低,仅为50.3%。检测935份血清PRRSV抗体,平均阳性率为84.4%,益阳地区的阳性率最高,为95.8%,免疫效果较理想,衡阳地区的阳性率最低（74%）。对不同生长阶段猪只进行评价,母猪阳性率最高,达88.1%,免疫基本达标,仔猪最低,仅为28.6%,免疫效果较差。检测1057份血清的PRV gB抗体,平均阳性率为88.5%,其中,永州地区免疫效果理想,阳性率达到100%,郴州地区阳性率最低,仅为75.9%。对不同生长阶段仔猪进行抗体检测,仔猪抗体阳性率最高,高达99.3%,免疫效果较理想,育肥猪的抗体阳性率最低,为65.8%。检测753份血清的PCV2抗体,平均阳性率为94.2%,岳阳、永州、长沙、益阳、衡阳均达到理想免疫效果,不同生长阶段猪群中,仔猪平均阳性率最高（99%）,免疫后达到理想免疫效果。育肥猪最低为57.1%。
祝闰琦[6]（2019）在《安徽地区PRRSV临床感染与流行毒株的监测与分析》文中提出猪繁殖与呼吸综合征（Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS）是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（Porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV）引起的以母猪流产、早产、死产、产木乃伊胎,各阶段的猪发生呼吸道疾病和高死亡率为特征的传染病。自我国首次报道PRRS至今,该病已历经20年的流行及演变,特别是2006年我国暴发高致病性PRRS（HP-PRRS）,给养猪业造成巨大的经济损失。2008年,美国分离到PRRSV变异株NADC30,其Nsp2蛋白存在131个氨基酸的不连续缺失。2012年以来,具有相同缺失特征的PRRSV NADC30-like已在我国多个省市相继出现,且与国内PRRSV流行毒株发生重组。PRRSV具有高度变异的特点,导致毒株多样性增加,不同毒株在致病性等方面存在一定差异,这给我国PRRS的防控带来了巨大的挑战。为了解近两年内PRRS的流行状况及变异特点,同时对流行毒株进一步探索,对安徽地区2017-2018年PRRSV临床感染情况进行调查及对临床流行毒株进行监测,旨在了解安徽地区猪群中PRRSV特征及感染发病情况,掌握安徽地区猪群中PRRSV临床流行毒株的流行趋势,从而为安徽地区科学、合理、有效防控PRRS提供依据和支撑。本研究针对2017～2018年安徽地区临床表现有呼吸道症状和繁殖障碍症状的疑似感染PRRSV的病（死）猪以及血清、唾液、精液等样品,首先利用实时荧光定量RT-PCR方法检测鉴定PRRSV,确定感染情况;在此基础上,利用实时荧光定量RT-PCR检测鉴定PRRSV为美洲型经典毒株,或HP-PRRSV,或PRRSVNADC30-like,或美洲型毒株;对于未能确定的毒株,通过对PRRSV ORF5基因和Nsp2部分基因进行扩增测序,从而验证未能确定的毒株类型。结果显示,安徽16个地市共计送检416例样品,PRRSV 阳性样品为223例,阳性检出率为53.6%。对不同类型样品、不同地区、不同季度、不同阶段和不同临床症状的PRRSV检测结果进行统计分析,其中病料组织和唾液中PRRSV的阳性检出率分别为56.8%和58.8%,显着高于血清和精液;安徽16个地市均存在PRRSV不同程度的感染,阳性检出率在26.7%～77.0%之间;第一季度到第四季度的PRRSV阳性检出率分别为72.3%、64.5%、55.6%、36.5%,无显着性差异;不同生长阶段（死胎和弱仔、保育猪、育肥猪）的PRRSV 阳性检出率各为29.2%、69.0%、46.3%,差异不显着;临床表现为呼吸道症状的PRRSV 阳性检出率为65.6%,显着高于繁殖障碍的阳性检出率29.2%。在223例PRRSV 阳性样品中,美洲型经典毒株的阳性检出率为19.7%,HP-PRRSV的阳性检出率为44.8%,PRRSV NADC30-like的阳性检出率为13.0%,美洲型毒株的阳性检出率为22.4%,其中以HP-PRRSV的阳性检出率最高。在不同类型样品、不同地区、不同季度、不同生长阶段以及不同临床症状的PRRSV毒株检测中,均检测出四种不同类型的毒株,主要以HP-PRRSV为主。结果表明,2017-2018年安徽地区PRRSV 阳性检出率为53.6%,在国内处于感染较严重状态;在病料组织和唾液样品中PRRSV检出率最高,PRRS在安徽的流行没有呈现明显的季节性和区域性,各生长阶段的猪均可感染PRRV,造成的临床症状以呼吸道症状为主。目前临床上PRRS的优势流行毒株是HP-PRRSV;PRRSV各毒株的流行存在区域性差异,但与季节性无关,不同类型样品以及不同生长阶段中的PRRSV检测优势毒株各不相同,引起繁殖障碍的毒株以HP-PRRSV多见,而引起呼吸道疾病的毒株则多种并存。
陈金闩[7]（2019）在《某规模化猪场猪蓝耳病的控制与净化实践》文中研究表明猪蓝耳病又称猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（PR/RSV）引起的以感染猪发热、厌食,妊娠母猪晚期流产、早产、产死胎、弱胎和木乃伊胎,各种年龄猪（特别是仔猪）呼吸障碍为特征的高度传染性疾病。目前PRRS已遍布世界各个养猪国家。自1995年PRRS传入我国大陆地区以来,该病在国内呈现明显的高发趋势,特别是在2006年,高致病性猪蓝耳病（HP-PRRS）的发生,给我国养猪业造成了巨大的经济损失。近几年来,在我国又陆续发现新的PRRSV毒株,如NADC30-like、GM2等。PRRS尚无特效药物疗法,主要采取综合防制措施限制病毒在养猪生产的各环节传播以及对症疗法。然而,控制PRRS最根本的办法还是要走净化之路（猪场净化、区域净化）。本研究以某规模化种猪扩繁场（由原先的PRRS阴性场感染成为PRRS阳性场）为实践对象,通过人工主动感染（血清驯化）和封群排毒净化方案的实施,实现了该猪场再次由PRRS阳性转为PRRS阴性,从而为PRRSV感染猪场制定有效的控制和根除措施提供实践参考依据。（一）猪场PRRSV感染及毒株类型的确定利用RT-PCR对病死猪的肺脏组织进行PRRSV检测,ELISA对仔猪、后备猪、母猪的血清进行PRRSV抗体检测,分子生物学技术对ORF5基因的PCR产物进行克隆、重组、鉴定、测序与分析,以确定感染PRRSV的毒株类型。结果显示,所取10头病死猪的肺脏组织均检测出PRRSV。85份血清样品检测出PRRSV抗体34份,总阳性率为40%,平均抗体S/P值为0.43,离散度为75.2%,其中仔猪阳性血清19份,阳性率为47.5%（19/40）,平均抗体S/P值为0.42,离散度为52.7%;后备猪全部为阴性;母猪阳性率为50.0%（15/30）,平均抗体S/P值为0.45,离散度为71.8%。扩增的ORF5基因序列（代号为AHChen-2017）与欧洲型毒株的相似度在64.7%～67.0%之间,与美洲型代表毒株VR-2332的相似度为86-1%,与HP-PRRSV代表毒株JXA1的相似度为97.4%,与国内经典株CH-1a的相似度为93.5%,与NADC30-like毒株（NVDC-R244-2014、NVDC-HeB1-2011）的相似度为 98.1%,且与NVDC-R244-2014处于同一分支。结果表明,本试验猪场出现的疫情系由PRRSV感染所致,感染的PRRSV 类型为 NADC30-like毒株。（二）猪群血清驯化、封群排毒、闭群监测与净化效果评价首先利用本场阳性猪的病毒血清,根据RT-PCR的鉴定结果确定血清最佳稀释浓度,定量稀释后釆用人工主动感染方式,对每头猪进行血清接种,接种后实行有效隔离,开展封群排毒,在此期间,对闭群猪群从PRRSV病原、抗体以及仔猪、后备猪和母猪的生产、生长性能方面进行持续性监测。结果显示,血清驯化的最佳稀释浓度为1:200,肌肉注射母猪650头、2mL/头,仔猪1400头、0.5mL/头,后备猪1500头、2mL/头;封群时间为200d;封群后第4、8、11、20、28周逐—分别检测,肺脏样品中PRRSV病原在第20、28周均为阴性,血清中PRRSV抗体在第20、28周阳性率均为0,平均抗体S/P值在第28周均降至0.10;母猪在第2周死亡200头、第3周死亡降至50头后,每周死亡的数量逐步下降,第14周后趋于稳定,同时母猪产死胎和木乃伊胎处于正常值范围内,而产活仔数、分娩率及流产情况均于第20周之后趋于平稳且在正常值范围内;仔猪在经历第1～11周死亡率忽高忽低之后,逐渐下降至第20周达到最低点5.4%,其后整体状态一直稳定良好;并且在整个封群中后期都进行了不间断的检测均为阴性及生长性能稳定,结果表明本次实践让该猪场实现了PRRSV的净化,再次由PRRS阳性场转为阴性场。
任锐,王欣宇,吉凤涛,穆国冬,苏双[8]（2018）在《一例猪繁殖与呼吸综合征的诊断与防制》文中研究说明猪繁殖与呼吸综合征（Porcine Reproductive and Respiratory Ryndrome PRRS）,又称蓝耳病,发病率高,死亡率高,对猪的养殖会造成巨大的经济损失。为了更好地进行猪繁殖与呼吸综合征的诊断和防制,本文针对吉林省某商品猪繁育场母猪流行繁殖障碍和仔猪发病死亡情况,根据临床症状、剖检病变、实验室检查和实时荧光RT-PCR方法,确诊一起猪繁殖与呼吸综合征。在应用猪繁殖与呼吸综合征灭活疫苗给种猪和保育仔猪免疫接种无效的情况下,通过改用猪繁殖与呼吸综合征活疫苗（R98株）对种猪和保育仔猪免疫接种、加强饲养管理、改善猪舍环境等防制措施,猪繁殖与呼吸综合征的流行得到了有效控制。由于猪繁殖与呼吸综合征的毒力因子现在仍然处于一个不断变化的状态,因此比较难处理,但此次对某商品猪场猪繁殖与呼吸综合征的有效控制,可以为今后该病的诊断和防治提供参考。
苏玮玮[9]（2017）在《高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒疫苗（TJM-F92株）微载体悬浮培养工艺研究》文中研究说明猪繁殖与呼吸综合征（porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS）,俗称蓝耳病,是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV）引起的猪的高度接触性传染病,病毒主要感染猪的肺巨噬细胞及其他免疫细胞,造成机体免疫系统抑制而引起母猪繁殖障碍、仔猪和育成猪的呼吸道系统疾病,同时会引起严重的继发感染,最终可导致动物的死亡。2006年我国爆发了高致病性猪繁殖与呼吸综合征（highly pathogenic porcine reproductive and respiratory syndrome,HP-PRRS）,给养猪业造成巨大经济损失。目前该病依旧为危害我国养猪业的重要疾病,疫苗的免疫接种仍是预防和控制该病最为重要的手段之一。现有的疫苗种类有活疫苗与灭活疫苗,由于接种灭活疫苗的效果不确定性,临床上活疫苗被广泛应用。抗原生产是疫苗制造的关键环节,是决定疫苗质量优劣的关键因素。目前国内绝大多数动物疫苗的生产,包括高致病性猪繁殖与呼吸综合征疫苗仍采用传统的转瓶生产工艺。本研究采用微载体悬浮工艺培养高致病性猪繁殖与呼吸综合征疫苗株（TJM-F92）,对其关键工艺环节与参数进行优化,实现了 5倍放大过程的病毒增殖应用,为提供批间稳定、抗原滴度高、安全有效的高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗打下了基础。1 Marc-145细胞微载体悬浮培养实验研究将Marc-145细胞接种至3 L和14 L生物反应器中,通过对搅拌转速、细胞溶氧值、细胞接种密度及微载体浓度等关键条件的对比试验,确定细胞在不同体积生物反应器中的最佳生长条件。结果表明,Marc-145细胞微载体悬浮培养温度设定在37℃,微载体浓度3～5 g/L,搅拌转速40～60rpm（3L生物反应器40～50 rpm、14L生物反应器45～60rpm）,营养液pH值7.2,溶氧50%,细胞接种密度1.5×105个/mg,培养72 h细胞密度可达到2.0×1 06个/ml以上。2 PRRSV（TJM-F92株）感染Marc-145细胞微载体悬浮培养实验研究将生产毒种最高代次PRRSV TJM株F97代病毒接种Marc-145细胞,通过实验确定其最佳接毒量（MOI）与最佳收毒时间,结果表明,按照MOI值为0.1接种,接种后36～48 h,出现70%CPE以上时收获病毒,病毒滴度可达到108.0TCID50/ml以上。3 PRRSV（TJM-F92株）微载体悬浮培养活疫苗的制备及安全与免疫效力试验研究采用优化的微载体悬浮工艺制备3批实验室制品,批次分别为2015001、2015002、2015003,3批疫苗冻干过程中冻干损失均小于100 5TCID50/头份。产品冻干结束后依据《高致病性猪繁殖与呼吸综合征活疫苗（TJM-F92株）质量标准》做全项检验,均符合标准。与市售的转瓶工艺同类制品做安全及免疫效力对比实验,结果显示安全实验均符合标准,且无明显差异;免疫效力对比实验,攻毒后疫苗免疫组发病保护率均能达到80%,对照组均不保护。通过成品的安全性试验、免疫效力试验证实采用微载体悬浮培养的疫苗安全性及有效性与转瓶生产的无差异,完全可以替代常规的转瓶培养疫苗。综上所述,通过高致病性猪繁殖与呼吸综合征（TJM-F92）疫苗株微载体悬浮培养工艺的关键技术研究,优化了 PRRSV微载体悬浮培养的生产工艺,为PRRSV的大规模培养提供可靠的参考数据。
邱骏[10]（2016）在《猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）病原分离鉴定及防控措施研究》文中研究说明本研究采集河南省及周边不同地区疑似PRRS病猪的组织病料进行PRRSV分离与鉴定,并对分离毒株进行遗传变异分析,以河南省PRRS的流行状况调查结果为基础,研究PRRSV弱毒疫苗、三仁汤复方中药制剂和抗PRRSV免疫血清对PRRS的防治效果,以寻求简捷、有效、实用的PRRS防控措施,以提高养猪业的生产水平。1、收集河南省及湖北部分市区20062014年疑似PRRS发病猪的病料180余份,用Marc-145细胞培养进行病毒分离与鉴定,分离得到10株PRRSV,其中河南省共9株,湖北襄樊1株,以美国经典株ATCCVR-2332和中国经典株CH-1a为参考毒株,将分离株的NSP2和ORF5-7片段分别克隆到p MD-18T载体并进行测序。结果表明PRRSV分离株均为美洲型毒株,且Nsp2基因均已发生了缺失,GP5基因没有缺失,只有基因位点突变;其中He N1-06与ATCCVR-2332处于同一个进化分支,其它9株毒株（He N2-06,He N3-06,He N1-07,He N2-07,He N3-07,He N1-08,He N2-08,He N3-08,He N4-08）与CH-1a株处于同一进化分支。证实了河南省PRRSV一直在变异,且以高致病性毒株为主流。2、PRRS母源抗体消长规律试验结果表明:仔猪母源抗体水平高低和维持时间长短与母猪初乳抗体水平呈正相关,母源抗体的S/P在14日龄最高,随后开始下降,21日龄下降速度加快,38日龄降到最低,平均半衰期12天,由此确定免疫方案:仔猪21日龄实行首免,45日龄二免,剂量1头份/头弱毒疫苗肌肉注射,种猪每年普免3次,剂量2头份/次弱毒疫苗肌肉注射。3、通过三仁汤复方中药制剂作用于Marc145细胞后,观察Marc145细胞的病变率（CPE）,研究三仁汤复方中药对PRRSV在Marc-145上的吸附阻断作用,增殖抑制作用以及直接灭活作用。结果表明:三仁汤复方中药制剂对PRRSV有较强的吸附阻断作用、增殖抑制作用和直接灭活作用,其最小质量浓度分别为125g/L、31.25g/L和15.625g/L。4、PRRS临床防控研究结果表明:按照上述免疫方案实施后,种猪配种分娩率由76.6%提高到90.5%,提高了13.9%;保育猪成活率由89.0%提高到98.0%,提高了9.0%;育肥猪成活率由87.0%提高到95.0%,提高了8.0%;三仁汤复方中药临床治疗1825头发生PRRS保育猪成活率达到99.28%,治疗8994头发生PRRS的育肥猪成活率达到95.73%;临床对照治疗实验结果表明:用三仁汤复方中药治疗1153头发生PRRS病猪成活率为97.66%,日增重390g/d,用抗生素控制继发感染治疗1040头发生PRRS病猪成活率为80.48%,日增重310g/d,成活率提高了17.18%,日增重提高了80g/d;用三仁汤治疗发生PRRS种猪群配种分娩率提高了39.8%,新生仔猪健仔率提高了53.2%。用抗PRRSV免疫血清在保育猪发生PRRS早期按1m L/kg体重剂量肌肉注射,成活率由86.56%提高到96.85%,提高了10.32%。综上所述,本研究证明,河南省PRRSV的感染与流行十分普遍,毒株已发生了不同程度的变异,运用PRRSV弱毒疫苗、三仁汤复方中药和抗PRRSV免疫血清联合防治PRRS的发生,有效减少了母猪流产和仔猪死亡,改善了猪群健康状况,提高猪场的生产水平。
二、猪繁殖和呼吸综合征的诊断及防制（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、猪繁殖和呼吸综合征的诊断及防制（论文提纲范文）
（1）新疆三个规模化猪场CSF、PR、PRRS及PCV2免疫抗体的动态检测及免疫程序优化（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 缩略词 |
| 引言 |
| 第一章 文献综述 |
| 1 猪瘟的研究现状 |
| 1.1 病原学 |
| 1.2 流行病学 |
| 1.3 致病机理 |
| 1.4 临床症状 |
| 1.5 病理变化 |
| 1.6 诊断与防控 |
| 2 猪伪狂犬病的研究现状 |
| 2.1 病原学 |
| 2.2 流行病学 |
| 2.3 发病机理 |
| 2.4 临诊症状 |
| 2.5 病理变化 |
| 2.6 诊断及防治 |
| 3 猪蓝耳病的研究现状 |
| 3.1 病原学 |
| 3.2 流行病学 |
| 3.3 致病机理 |
| 3.4 临床症状 |
| 3.5 病理变化 |
| 3.6 诊断及防治 |
| 4 猪圆环病毒相关疾病研究现状 |
| 4.1 病原学 |
| 4.2 流行病学 |
| 4.3 致病机理 |
| 4.4 临诊症状 |
| 4.5 临床诊断 |
| 4.6 防治措施 |
| 5 我国当前规模化养猪场病毒性传染病的现状 |
| 5.1 流行病学 |
| 5.2 疫苗免疫 |
| 5.3 免疫程序 |
| 6 本文的研究目的与意义 |
| 第二章 试验研究 |
| 实验一 新疆不同地区三个规模化猪场CSF抗体的检测测及免疫程序优化 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 实验材料 |
| 1.2 实验方法 |
| 2 实验结果 |
| 2.1 三个不同地区猪场猪瘟免疫抗体检测结果 |
| 2.2 2019 年春季猪瘟免疫抗体检测结果 |
| 2.3 2019 年秋季猪瘟免疫抗体检测结果 |
| 2.4 免疫程序优化 |
| 3 讨论 |
| 3.1 A猪场猪瘟抗体的分析 |
| 3.2 B猪场猪瘟抗体的分析 |
| 3.3 C猪场猪瘟抗体的分析 |
| 实验二 新疆不同地区三个规模化猪场PR抗体的检测及免疫程序优化 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 实验方法 |
| 2 实验结果 |
| 2.1 三个不同地区猪场猪伪狂犬免疫抗体检测结果 |
| 2.2 2019 年春季猪伪狂犬免疫抗体检测结果 |
| 2.3 2019 年秋季猪伪狂犬免疫抗体检测结果 |
| 2.4 免疫程序优化 |
| 3 讨论 |
| 3.1 A猪场伪狂犬抗体的分析 |
| 3.2 B猪场伪狂犬抗体的分析 |
| 3.3 C猪场伪狂犬抗体的分析 |
| 实验三 新疆不同地区三个规模化猪PRRS抗体的检测及免疫程序优化 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 实验方法 |
| 2 实验结果 |
| 2.1 三个不同地区猪场猪繁殖与呼吸综合征免疫抗体检测结果 |
| 2.2 2019 年春季猪繁殖与呼吸综合征免疫抗体检测结果 |
| 2.3 2019 年秋季猪繁殖与呼吸综合征免疫抗体检测结果 |
| 2.4 猪繁殖与呼吸综合征免疫程序优化调整 |
| 3 讨论 |
| 3.1 A猪场PRRSV抗体结果分析 |
| 3.2 B猪场PRRSV抗体结果分析 |
| 3.3 C猪 PRRSV抗体结果分析 |
| 实验四 新疆不同地区三个规模化猪PCV2 抗体的检测及免疫程序优化 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 实验方法 |
| 2 实验结果 |
| 2.1 三个不同地区猪圆环病免疫抗体检测结果 |
| 2.2 2019 年春季猪圆环病免疫抗体检测结果 |
| 2.3 2019 年秋季猪圆环病抗体检测结果 |
| 2.4 猪圆环病毒病免疫程序优化调整 |
| 3 讨论 |
| 3.1 A猪场圆环抗体结果分析 |
| 3.2 B猪场圆环抗体结果分析 |
| 3.3 C猪场圆环抗体结果分析 |
| 全文总结 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 附录 猪瘟抗体检测方法 |
| 作者简介 |
| 在学校期间参与的研究课题 |
| 在校期间发表的文章 |
| 附件 |
（2）昌吉地区规模化猪场猪繁殖与呼吸障碍综合征的调查及分析（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 英文缩略词表 |
| 引言 |
| 第一章 文献综述 |
| 1.PRRS的起源 |
| 2.病原学 |
| 2.1 PRRSV的形态结构 |
| 2.2 PRRSV的基因组结构 |
| 2.3 PRRSV的理化特点 |
| 2.4 PRRSV的流行病学 |
| 2.5 临床症状 |
| 3.诊断及防治 |
| 3.1 PRRS的诊断 |
| 3.2 PRRS防治措施 |
| 4.本项研究的目的及意义 |
| 第二章 昌吉地区猪繁殖与呼吸综合征的现场流行病学调查 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 PRRS 的诊断 |
| 1.2.2 现场调查及内容 |
| 1.2.3 数据处理 |
| 2 结果 |
| 2.1 PRRS的发病情况调查结果 |
| 2.2 猪场的基本环境情况调查结果 |
| 3 讨论与分析 |
| 3.1 PRRS的发病率与季节的关系 |
| 3.2 PRRS的发病率与猪阶段的关系 |
| 3.3 PRRS的发病率与疫苗免疫的关系 |
| 3.4 PRRS的发病率与环境的关系 |
| 4 小结 |
| 第三章 呼图壁某规模化猪场猪繁殖与呼吸综合征病毒部分流行毒株的检测 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果 |
| 2.1 通用美洲PRRSV的 RT-q PCR方法的评价及样品检测结果 |
| 2.2 类NADC-30 毒株的RT-q PCR方法的评价及样品检测结果 |
| 3 讨论与分析 |
| 3.1 美洲型PRRSV毒株的检测分析 |
| 3.2 类NADC-30型毒株的检测分析 |
| 4.小结 |
| 第四章 昌吉地区猪繁殖与呼吸综合征的血清学调查 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.2 方法 |
| 2 结果 |
| 2.1 不同季度抗体检测结果汇总分析 |
| 2.2 不同猪群的抗体阳性率及离散度分析 |
| 3 讨论与分析 |
| 3.1 PRRS的抗体检测数据总体分析 |
| 3.2 三个猪场PRRS的抗体检测数据分析 |
| 3.3 猪群的免疫与抗体水平之间的关系分析 |
| 4 小结 |
| 全文总结 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 作者简介 |
| 石河子大学硕士研究生学位论文导师评阅表 |
（3）猪繁殖与呼吸综合征病毒类NADC30毒株感染场疫苗免疫控制方案应用研究（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| 1 文献综述 |
| 2 引言 |
| 试验一 不同免疫方案对母猪和仔猪的免疫效果评价 |
| 1 材料与方法 |
| 2 结果与分析 |
| 3 结论与讨论 |
| 试验二 不同免疫方案对母猪和仔猪的免疫效果二次评价 |
| 1 材料与方法 |
| 2 结果与分析 |
| 3 结论与讨论 |
| 全文总结 |
| 参考文献 |
| Abstract |
（4）两种PRRSV疫苗对猪肺泡巨噬细胞相关细胞因子表达的影响（论文提纲范文）
| 摘要 |
| abstract |
| 第1章 猪繁殖与呼吸综合征病毒概述 |
| 1.1 PRRSV病原基本特征及理化性质 |
| 1.1.1 PRRSV形态结构 |
| 1.1.2 猪繁殖与呼吸综合征病毒分类 |
| 1.1.3 猪繁殖与呼吸综合征病毒的理化特性 |
| 1.1.4 PRRSV流行变异情况 |
| 1.1.5 流行病学 |
| 1.1.6 临床症状 |
| 1.1.7 病理变化 |
| 1.1.8 诊断方法 |
| 1.2 PRRSV致病机制 |
| 1.2.1 PRRSV对 PAM感染过程 |
| 1.2.2 PRRSV对母猪的致病机制 |
| 1.2.3 PRRSV对仔猪致病机制 |
| 1.2.4 PRRSV对公猪致病机制 |
| 1.3 PRRSV感染造成的免疫抑制机制 |
| 1.3.1 PRRSV对天然的免疫的抑制 |
| 1.3.2 中和抗体产生延迟 |
| 1.3.3 PRRSV抗体依赖性增强(ADE) |
| 1.4 PRRSV对肺泡巨噬细胞细胞因子表达的影响 |
| 1.4.1 对促炎细胞因子表达的影响 |
| 1.4.2 对先天性免疫细胞因子表达的影响 |
| 1.4.3 对免疫抑制性细胞因子表达的影响 |
| 1.5 PRRSV对肺泡巨噬细胞抗原递呈因子表达的影响 |
| 1.6 PRRSV疫苗研究进展 |
| 1.6.1 常规疫苗进展 |
| 1.6.2 新型疫苗进展 |
| 1.7 研究目的和意义 |
| 1.7.1 建立双重NSP2-ORF5PCR方法目的及意义 |
| 1.7.2 监测两种PRRSV疫苗对猪泡肺巨噬细胞相关因子动态表达目的及意义 |
| 第2章 NSP2-ORF5 双重PCR建立及初步应用 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 实验主要试剂和耗材 |
| 2.1.2 实验主要的仪器设备及器材 |
| 2.2 ORF5和NSP2 引物序列及反应体系 |
| 2.3 样品处理 |
| 2.4 实验方法 |
| 2.4.1 总RNA提取 |
| 2.4.2 总DNA的提取 |
| 2.4.3 总cDNA反转录合成 |
| 2.4.4 样本总RNA/DNA浓度测量 |
| 2.4.5 最佳退火温度测定 |
| 2.4.6 最佳引物浓度配比 |
| 2.4.7 引物特异性测定 |
| 2.4.8 敏感性测定 |
| 2.4.9 NSP2-ORF5 双重PCR方法初步应用 |
| 2.5 结果与分析 |
| 2.5.1 最佳退火温度结果 |
| 2.5.2 引物浓度配比结果 |
| 2.5.3 特异性测定结果 |
| 2.5.4 敏感性测定结果 |
| 2.5.5 双重PCR的临床检测结果 |
| 2.6 NSP2和ORF5 基因分析 |
| 2.6.1 ORF5 基因分析结果 |
| 2.6.2 NSP2 基因分析结果 |
| 2.7 分析讨论 |
| 2.8 小结 |
| 第3章 两种PRRSV疫苗对猪泡肺巨噬细胞相关因子表达的影响 |
| 3.1 实验材料 |
| 3.1.1 实验主要试剂和耗材 |
| 3.1.2 实验主要的仪器设备及器材 |
| 3.2 实验所用试剂的配制方法 |
| 3.3 PCR及实时qRT-PCR检测引物序列及反应体系 |
| 3.4 疫苗的来源 |
| 3.5 实验方法 |
| 3.5.1 猪肺泡巨噬细胞病原PCR检测 |
| 3.5.2 灌洗法分离培养猪巨噬细胞及计数 |
| 3.5.3 PRRSV疫苗稀释方法 |
| 3.5.4 猪肺泡巨噬细胞的分组接毒 |
| 3.6 数据统计及分析 |
| 3.7 结果 |
| 3.7.1 猪肺泡巨噬细胞分离纯化的结果 |
| 3.7.2 猪肺泡巨噬细胞计数的结果及接毒计定 |
| 3.7.3 猪肺泡巨噬细胞的病原检测结果 |
| 3.7.4 猪肺泡巨噬细胞抗原递呈分子及细胞因子动态表达结果 |
| 3.8 分析讨论 |
| 3.8.1 疫苗对猪肺泡巨噬细胞抗原递呈功能分子表达的影响 |
| 3.8.2 疫苗对猪肺泡巨噬细胞细胞因子表达的影响 |
| 3.9 实验小结 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 个人简介 |
（5）湖南部分地区CSFV、PRRSV、PRV、PCV2血清抗体的监测（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第1章 文献综述 |
| 1.1 猪瘟研究进展 |
| 1.1.1 CSF概述 |
| 1.1.2 CSF病原学 |
| 1.1.3 CSF流行病学 |
| 1.1.4 CSF临床症状及病理变化 |
| 1.1.5 CSF诊断 |
| 1.1.6 CSF防控 |
| 1.2 猪繁殖与呼吸综合征研究进展 |
| 1.2.1 PRRS概述 |
| 1.2.2 PRRS病原学 |
| 1.2.3 PRRS流行病学 |
| 1.2.4 PRRS临床症状及病理变化 |
| 1.2.5 PRRS诊断 |
| 1.2.6 PRRS防控 |
| 1.3 猪伪狂犬病研究进展 |
| 1.3.1 PR概述 |
| 1.3.2 PR病原学 |
| 1.3.3 PR流行病学 |
| 1.3.4 PR临床症状及病理变化 |
| 1.3.5 PR诊断 |
| 1.3.6 PR防控 |
| 1.4 猪圆环病毒2型研究进展 |
| 1.4.1 PCV2概述 |
| 1.4.2 PCV2病原学 |
| 1.4.3 PCV2流行病学 |
| 1.4.4 PCV2临床症状及病理变化 |
| 1.4.5 PCV2诊断 |
| 1.4.6 PCV2防控 |
| 第2章 湖南部分地区CSFV、PRRSV、PRV野毒感染的血清学调查 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 材料 |
| 2.1.2 方法 |
| 2.1.3 结果判定 |
| 2.2 结果 |
| 2.2.1 湖南部分地区CSFV野毒感染的血清学调查结果 |
| 2.2.2 湖南部分地区PRRSV野毒感染的血清学调查结果 |
| 2.2.3 湖南部分地区PRV gE野毒感染的血清学调查结果 |
| 2.3 讨论 |
| 第3章 湖南部分地区CSFV、PRRSV、PRV、PCV2免疫抗体的监测 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.1.1 材料 |
| 3.1.2 方法 |
| 3.1.3 结果判定 |
| 3.2 结果 |
| 3.2.1 湖南部分地区CSFV抗体检测结果 |
| 3.2.2 湖南部分地区PRRSV抗体检测结果 |
| 3.2.3 湖南部分地区PRV gB抗体检测结果 |
| 3.2.4 湖南部分地区PCV2抗体检测结果 |
| 3.3 讨论 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 作者简介 |
（6）安徽地区PRRSV临床感染与流行毒株的监测与分析（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| Abstract |
| 主要缩略语对照表 |
| 文献综述 |
| 引言 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.1.1 样品来源 |
| 1.1.2 主要试剂及试剂盒 |
| 1.1.3 主要仪器设备 |
| 1.1.4 试验用溶液及培养基的配制 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 样品处理 |
| 1.2.2 对照处理 |
| 1.2.3 病毒RNA提取 |
| 1.2.4 PRRSV检测 |
| 1.2.5 PRRSV美洲型经典毒株和HP-PRRSV双重实时荧光RT-PCR检测 |
| 1.2.6 NADC30-like PRRSV的检测 |
| 1.2.7 PRRSV美洲型毒株的检测 |
| 1.2.8 PRRSV测序验证 |
| 1.2.9 数据处理 |
| 2 结果 |
| 2.1 PRRSV检测结果 |
| 2.1.1 不同类型样品的PRRSV检测结果 |
| 2.1.2 不同地区样品的PRRSV检测结果 |
| 2.1.3 不同季度样品的PRRSV检测结果 |
| 2.1.4 不同生长阶段样品的PRRSV检测结果 |
| 2.1.5 不同临床症状样品的PRRSV检测结果 |
| 2.2 PRRSV毒株类型的检测结果 |
| 2.2.1 不同类型样品的PRRSV毒株类型的检测结果 |
| 2.2.2 不同地区的PRRSV毒株类型的检测结果 |
| 2.2.3 不同季度的PRRSV毒株类型的检测结果 |
| 2.2.4 不同阶段的PRRSV毒株类型的检测结果 |
| 2.2.5 不同临床症状的PRRSV毒株类型的检测结果 |
| 3 讨论 |
| 3.1 PRRSV检测结果分析 |
| 3.2 PRRSV毒株类型的检测结果分析 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 附录A |
| 作者简介 |
（7）某规模化猪场猪蓝耳病的控制与净化实践（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 主要缩略语列表 |
| 文献综述 |
| 1 PRRS的病原学 |
| 1.1 分类与形态 |
| 1.2 基因组结构与遗传特征 |
| 1.3 理化性质与体外培养特征 |
| 2 PRRSV的流行病学 |
| 3 PRRS的发病机理 |
| 4 PRRSV的临床症状 |
| 4.1 最急性型 |
| 4.2 急性型 |
| 4.3 慢性型 |
| 5 PRRSV的病理变化 |
| 6 PRRS的诊断 |
| 6.1 病原学诊断 |
| 6.2 血清学诊断 |
| 7 类症鉴别 |
| 7.1 猪伪狂犬病 |
| 7.2 猪细小病毒病 |
| 7.3 猪乙型脑炎 |
| 7.4 猪布氏杆菌病 |
| 8 PRRS的防控与净化 |
| 8.1 疫苗免疫 |
| 8.2 生物安全和生产管理 |
| 8.3 引种、封群、驯化策略 |
| 8.4 药物控制 |
| 9 结语 |
| 引言 |
| 1 材料与方法 |
| 1.1 材料 |
| 1.1.1 试验猪场 |
| 1.1.2 试剂、工具酶及分子生物学材料 |
| 1.1.3 主要培养基与溶液的配制 |
| 1.1.4 主要设备仪器 |
| 1.2 方法 |
| 1.2.1 猪场PRRSV感染及毒株类型的确定 |
| 1.2.2 猪群的血清驯化 |
| 1.2.3 猪场的封群与监测 |
| 2 结果 |
| 2.1 猪场PRRSV感染及毒株类型的确定 |
| 2.1.1 病死猪肺组织PRRSV的RT-PCR检测结果 |
| 2.1.2 血清中PRRSV抗体ELISA检测结果 |
| 2.1.3 PRRSV毒株类型鉴定结果 |
| 2.2 猪群血清驯化免疫 |
| 2.2.1 驯化血清的制备 |
| 2.2.2 驯化血清最佳稀释浓度的结果 |
| 2.2.3 猪群全部接种驯化血清 |
| 2.3 猪场封群与监测 |
| 2.3.1 猪肺组织PRRSV病原检测结果 |
| 2.3.2 猪血清PRRSV抗体检测结果 |
| 2.3.3 生产和生长性能监测 |
| 3 讨论 |
| 3.1 实践猪场PRRSV感染的确定及毒株类型的鉴定 |
| 3.2 实践猪场PRRS的净化措施与监测 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 个人简历 |
（9）高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒疫苗（TJM-F92株）微载体悬浮培养工艺研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 英文缩略表 |
| 第一部分 文献综述 |
| 综述一 猪繁殖与呼吸综合征研究进展 |
| 综述二 大规模细胞培养技术概述 |
| 参考文献 |
| 第一章 MARC-145细胞微载体悬浮培养实验研究 |
| 1 材料与方法 |
| 2 结果 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 第二章 PRRSV(TJM-F92株)感染MARC-145细胞微载体悬浮培养实验研究 |
| 1 材料与方法 |
| 2 结果 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 第三章 PRRSV(TJM-F92株)微载体悬浮培养活疫苗制备及安全与免疫效力试验研究 |
| 1 材料与方法 |
| 2 结果 |
| 3 讨论 |
| 4 结论 |
| 参考文献 |
| 全文结论 |
| 致谢 |
（10）猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）病原分离鉴定及防控措施研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 第一篇 文献综述 |
| 1 猪繁殖与呼吸综合征 |
| 1.1 PRRS的流行概述 |
| 1.2 PRRSV的病原学特征 |
| 1.3 PRRSV的分子生物学研究进展 |
| 1.4 PRRSV的免疫学研究进展 |
| 1.5 PRRS诊断方法的研究进展 |
| 1.6 PRRS防控技术研究进展 |
| 2 本研究的目的和意义 |
| 第二篇 研究内容 |
| 第1章 河南省PRRSV流行毒株的分离与鉴定 |
| 1.1 材料与方法 |
| 1.2 结果 |
| 1.3 讨论 |
| 1.4 小结 |
| 第2章 河南省PRRSV分离株的遗传变异分析 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.2 结果 |
| 2.3 讨论 |
| 2.4 小结 |
| 第3章 PRRS母源抗体消长规律及疫苗应用效果研究 |
| 3.1 材料与方法 |
| 3.2 结果 |
| 3.3 讨论 |
| 3.4 小结 |
| 第4章 三仁汤复方中药制剂对PRRSV体外抑制作用及临床应用效果研究 |
| 4.1 材料与方法 |
| 4.2 结果 |
| 4.3 讨论 |
| 4.4 小结 |
| 第5章 抗PRRSV免疫血清的制备及其临床效果研究 |
| 5.1 材料与方法 |
| 5.2 结果 |
| 5.3 讨论 |
| 5.4 小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 导师简介 |
| 作者简介 |
| 在学期间所取得的科研成果 |
| 致谢 |
四、猪繁殖和呼吸综合征的诊断及防制（论文参考文献）
- [1]新疆三个规模化猪场CSF、PR、PRRS及PCV2免疫抗体的动态检测及免疫程序优化[D]. 马铭. 石河子大学, 2020(08)
- [2]昌吉地区规模化猪场猪繁殖与呼吸障碍综合征的调查及分析[D]. 戴鑫鑫. 石河子大学, 2020(05)
- [3]猪繁殖与呼吸综合征病毒类NADC30毒株感染场疫苗免疫控制方案应用研究[D]. 马坚. 河南农业大学, 2019(06)
- [4]两种PRRSV疫苗对猪肺泡巨噬细胞相关细胞因子表达的影响[D]. 熊立智. 湖南农业大学, 2019(08)
- [5]湖南部分地区CSFV、PRRSV、PRV、PCV2血清抗体的监测[D]. 于浩洋. 湖南农业大学, 2019(08)
- [6]安徽地区PRRSV临床感染与流行毒株的监测与分析[D]. 祝闰琦. 安徽农业大学, 2019(05)
- [7]某规模化猪场猪蓝耳病的控制与净化实践[D]. 陈金闩. 安徽农业大学, 2019(05)
- [8]一例猪繁殖与呼吸综合征的诊断与防制[J]. 任锐,王欣宇,吉凤涛,穆国冬,苏双. 现代畜牧兽医, 2018(12)
- [9]高致病性猪繁殖与呼吸综合征病毒疫苗（TJM-F92株）微载体悬浮培养工艺研究[D]. 苏玮玮. 扬州大学, 2017(01)
- [10]猪繁殖与呼吸综合征（PRRS）病原分离鉴定及防控措施研究[D]. 邱骏. 吉林大学, 2016(08)