一、食品添加剂桔皮黄色素的提取及其性质（论文文献综述）
周艳蕊[1]（2020）在《鲜榨橙汁加工新工艺及副产物高值开发》文中认为橙汁色香味营养俱佳,深受消费者喜爱;而橙子榨汁后的橙皮作为副产物往往得不到充分利用,大都作为垃圾处理,资源浪费严重,且对环境造成一定污染;鉴于橙皮富含类胡萝卜素、果胶等高附加值的组分,进行深度开发,将大大提高橙子的综合利用价值,意义非常重大。为此,本研究以橙子为加工对象,开发出橙皮强化橙汁的制备新工艺;同时,探讨了超声辅助酸法提取橙皮果胶工艺,优化超声辅助萃取橙皮色素工艺。主要研究结果如下:（1）以橙子果肉汁、橙皮浆液、白砂糖和柠檬酸四个因素为指标,单因素实验探究各个因素对强化橙汁的影响,并在单因素的基础上进行正交试验,确定最佳强化型饮料的配方组合为橙汁43%,橙皮浆液4%,白砂糖5%,柠檬酸0.05%,综合评定其产品感官品质最佳。进行3次平行试验验证,得到饮料的平均感官评分为92.1。为避免橙汁饮料在贮藏期间发生分层现象,选取黄原胶、羧甲基纤维素钠和果胶三种稳定剂,进行单因素及正交试验,结果表明羧甲基纤维素钠0.09%、果胶0.06%,黄原胶0.05%为复合稳定剂最佳添加量。（2）超声辅助酸法提取橙皮果胶,探究料液比、提取温度、超声提取时间、p H值对提取效果的影响。采用超声辅助酸法提取果胶,目标组分得率和质量都有提高。在提取橙皮果胶中,萃取溶剂选择盐酸最适宜。萃取料液比为1:50,提取液p H值为2.0,提取温度为70℃,超声提取时间为70min,橙皮果胶提取率可达20.30%。进行验证试验,果胶提取率为21.32%。并探究了活性炭脱色、AB-8树脂脱色、D-101树脂脱色、硅藻土脱色对采用超声波辅助酸法提取的粗果胶进行纯化,比较几种吸附剂对果胶的纯化效果,并对纯化前后的果胶进行理化指标的测定,结果显示通过AB-8大孔吸附树脂纯化后的果胶与粗果胶相比,果胶含量提高了18.29%,酯化度提高了14.75%。（3）对橙皮色素提取进行了优化,在考察了料液比、超声提取时间、乙醇浓度、提取温度等因素对色素提取效率的影响。在单因素的基础上进行正交试验,确定最佳色素提取工艺条件为料液比1:75,提取温度为50℃,乙醇溶液体积分数95%,超声时间为70min,主要影响因素为料液比。进行验证试验,橙皮色素吸光光度值平均值是1.021,色素得率为9.217%,提取率较高。
郁兴娜[2]（2020）在《柑橘皮β-胡萝卜素提取及微胶囊制备与应用研究》文中研究表明我国柑橘总种植面积和产量分居世界第一、第二位,已成为支撑我国农村经济的支柱型产业之一。柑橘加工常伴随着约30%-50%的皮渣副产物,有效提高其综合利用率成为柑橘产业亟待解决的问题。β-胡萝卜素是橘皮中重要的脂溶性色素,具有抗氧化、降血脂、增强免疫力等多种功能,因此,从橘皮中回收β-胡萝卜素成为提高综合利用率和经济附加值的重要措施。但是,β-胡萝卜素的生物活性极易受光照、温度、氧含量等环境因素影响,限制了其在实际生产中的应用。本课题以柑橘皮渣为原料,采用超声辅助有机溶剂萃取其中的β-胡萝卜素,在此基础上利用复凝聚法将其微胶囊化并优化制备工艺,以期为橘皮副产物的综合利用及β-胡萝卜素微胶囊的工业化应用提供参考。主要研究结果如下:（1）采用单因素实验,明确不同料液比、不同提取时间、温度等条件下柑橘皮渣中β-胡萝卜素的萃取率;在单因素实验基础上,通过L9（34）的正交试验优化了β-胡萝卜素的萃取工艺,结果表明影响β-胡萝卜素提取量因素的主次关系为提取温度>提取时间>料液比,综合经济因素,确定最终优化方案为:料液比1:10,提取时间15 min,提取温度35℃。此条件下β-胡萝卜素的提取量为28.00 mg/kg,纯度达到92.10%。（2）研究了不同pH对微胶囊壁材体系的带电性质和浊度的影响,以及不同比例明胶/CMC配比对壁材复聚物乳化活性的影响,结果显示:随着pH增加,明胶溶液、CMC溶液及明胶/CMC（9:1）溶液的电位均逐渐降低,明胶/CMC（9:1）混合溶液体系在pH为4.5时达到正负电荷平衡（静电荷为0）且复聚物具有较高产率;明胶-CMC复聚物的乳化活性随着配比的增加先增高后减少,在配比为10:1时乳化活性指数达到最大值。（3）以不同壁材浓度、不同均质速度、不同固化剂添加量、不同pH及不同油相为考察因素,采用单因素实验研究不同条件对β-胡萝卜素微胶囊包埋率的影响,在此基础上进行响应面设计,结果显示柑橘皮β-胡萝卜素微胶囊最佳制备工艺为:pH 4.65、壁材浓度0.91%、均质速度8804.05 rpm、固化剂添加量为25μg,油相选取玉米油,该工艺条件下β-胡萝卜素微胶囊的包埋率达到87.50%。（4）最优工艺条件下制备的β-胡萝卜素微胶囊:包埋率为86.21%,产率为84.31%,水分含量8.72%,密度0.72 g/cm3,休止角35.60°,粒径31.29μm,堆密度897,在水中分散性良好,有轻微β-胡萝卜素气味、粉末呈橙黄色、颗粒疏松。经微胶囊化的β-胡萝卜素被包埋在结构致密且稳定的囊壁中,对空气、温度及光照的耐受性均显着提高。同时微胶囊的稳定结构可以保护β-胡萝卜素在模拟胃液中不被释放,在模拟肠液中4 h左右β-胡萝卜素微胶囊的模拟生物利用率都达到70%左右,与对照组无差异（P>0.05）。（5）将β-胡萝卜素微胶囊添加到曲奇饼干中,结果显示β-胡萝卜素微胶囊饼干在硬度N、脆性、弹性、凝聚力、胶粘性、咀嚼性这些质构指标上与对照组无显着性差异（P>0.05）,但在色泽方面却有较大差异。
张明亮[3]（2019）在《蛹虫草黄色素的分离鉴定、稳定性及培养条件研究》文中研究说明本试验以蛹虫草为供试材料,采用响应面法对超声波辅助乙醇水溶液提取蛹虫草黄色素的工艺进行优化,并采用IR、UV、UPLC、MS分析蛹虫草黄色素的组成及结构。采用硅胶柱层析技术、低压反相硅胶柱层析技术及高压制备分离技术分对蛹虫草黄色素的主要组分进行纯化,并对其稳定性进行研究。为了提高蛹虫草黄色素的产量,对蛹虫草产黄色素的菌丝培养条件进行研究。试验结果如下:（1）蛹虫草黄色素的最佳提取溶剂为乙醇溶液。采用Box-Behnken试验设计和响应面分析法,得出最佳的提取工艺为:乙醇浓度57%、液料比32.00:1（mL/g）、提取时间18min。在此条件下测定实际蛹虫草黄色素的提取率为1.976±0.017mg/g。（2）蛹虫草黄色素主要是由YP-1、YP-2、YP-3、YP-4四种组分组成,其分子式分别为:C33H34O4、C34H36O4、C35H38O4、C36H40O4,其紫外吸收峰均在420nm、445nm、475nm左右,其中YP-3占到总含量的57.43%。经过硅胶柱层析、低压反相硅胶柱层析及高压制备分离得到YP-3,通过对YP-3稳定性的研究发现:YP-3分别在高温、黑暗条件下稳定,分别在pH67、Zn2+、Ca2+、Mg2+、Al3+、Na+、K+及瓜尔多胶、卡拉胶、CMC、维生素C、蔗糖素、苯甲酸钠的环境中稳定;在紫外光照射下易分解,分别在含Fe3+和含柠檬酸的环境中易分解。（3）培养条件优化试验发现:最佳的碳源为蔗糖,氮源为牛肉膏,光源为紫光。最佳培养条件为:蔗糖30g/L、牛肉膏7g/L、MgSO4 0.5g/L、KH2PO4 1.0g/L、FeSO4·7H2O0.01g/L、琼脂20g/L、PH6.5。先经过20d的黑暗培养,然后在紫光强度为250Lx的条件下培养3d。在此条件下蛹虫草菌丝体黄色素的产量可达到465ug/dish,与优化前的单因素相比提高了16.25%,优化效果显着。综上所述,蛹虫草黄色素主要是由4种结构类似的类胡萝卜素组成的,并且具有良好的稳定性。此研究结果为蛹虫草黄色素乃至其他优质天然黄色素的开发利用提供参考依据。
唐鸿标[4]（2019）在《蛹虫草新型黄色素的分离纯化与结构鉴定及其性质功能研究》文中进行了进一步梳理蛹虫草是一种重要的食药两用菌,富含核苷类、虫草多糖和水溶性类胡萝卜素等多种生物活性成分,具有多种药用功效,如抗炎、抗肿瘤、抗衰老等。蛹虫草菌株在固体、液体培养基发酵培养条件下,当受到充足的光照刺激,子实体、菌丝的颜色皆会发生改变,由白色转变为橙黄色。近年来,对蛹虫草子实体黄色素的研究发现了6种类胡萝卜素,其中4种为具有较强水溶性的cordyxanthins。相较于传统的脂溶性类胡萝卜素,这4种天然水溶性类胡萝卜素较易被人体消化吸收,理论上也具有更强的潜在药用活性。为了对蛹虫草黄色素作进一步的开发利用,并研究黄色素潜在的功能活性,本文利用高效液相色谱法作为分离纯化方法,结合4大光谱（UV-vis、FTIR、HRMS、NMR）对黄色素结构进行鉴定,旨在开发具有新型结构的蛹虫草黄色素,并进一步探究新型色素的功能活性。本文的主要研究结果如下:（1）建立了高效的蛹虫草黄色素分离纯法方法,洗脱时间14 min内实现了蛹虫草黄色素的成功分离,并利用制备型HPLC对4号、5号峰进行制备收集,分别命名为CMPP-1、2号,结果表明2个纯化色素的纯度均>95%。（2）响应面优化蛹虫草CMPP-2的最佳提取条件为:乙醇浓度57.68%、提取温度44.40℃、提取时间52.44 min,实际测定CMPP-2的提取量为2259.23±83.98μg/g,提取级数确定为3级。（3）成功鉴定CMPP-2分子结构,并将其命名为虫草烯（cordycepene）。虫草烯在278、449和477 nm处检测到最大吸收波长,分子量大小为263.1158 m/z,分子式为C14H17N1O4,是一种具有全新结构的新型色素。（4）研究了虫草烯的稳定性。结果表明,不同光照与空气对虫草烯稳定性影响的顺序为:紫外光>自然光>空气;高温（>40℃）对虫草烯稳定性影响明显;Fe3+对虫草烯具有保护作用,K+、Na+、Ca2+对虫草烯影响较小;不同p H值对虫草烯稳定性影响的顺序为:1>3>13>11>5>9>7;常用食品添加剂对虫草烯稳定性的影响结果表明,高浓度（1.5%）的强酸味剂柠檬酸和防腐剂以及氧化还原剂对虫草烯稳定性影响较大。（5）研究了虫草烯抗氧化活力。结果表明,虫草烯的DPPH自由基清除活力明显高于粗提物。当虫草烯的浓度增加至2 mg/m L时,虫草烯的DPPH自由基清除活性与对照组Vc接近。不同浓度（0-50μg/m L）的虫草烯对正常HSF细胞没有任何细胞毒性作用,浓度高于25μg/m L的虫草烯具有修复衰老HSF细胞的能力。同时,虫草烯会显着增加衰老HSF细胞胞内抗氧化酶活性（SOD,GSH-Px和CAT）并降低MDA水平,并且具有剂量依赖性。
赵二劳,王明华,高子怡,赵三虎[5]（2017）在《玉米皮活性成分提取工艺研究进展》文中研究表明玉米皮是玉米加工的主要副产品,含有多种活性成分。文章综述近10年来中国玉米皮中活性成分提取工艺研究进展,展望玉米皮活性成分研究方向,旨在为玉米皮的全面开发利用提供参考。
吴菲菲,陈琼,赵良忠,李化强,徐永平,李淑英[6]（2017）在《微切变-助剂互作技术辅助提取柑橘皮黄色素的工艺研究》文中研究说明目的建立并优化微切变-助剂互作技术提取橘皮中黄色素的工艺条件。方法以柠檬酸钠为助剂,雪峰蜜橘为主要原料,采用索氏提取法提取柑橘皮黄色素,并检测其吸光度值。针对黄色素提取的效果,考察了柠檬酸钠助剂量、乙醇浓度、提取时间和提取温度4个单因素,并正交优化出最优条件。结果最优工艺为:助剂添加量4%（m:m）、乙醇浓度85%（V:V）、提取时间2.5 h、提取温度99℃,此时320 nm处吸光度值为0.545,对照粗粉组吸光度值为0.482,最佳工艺条件下色素提取量是对照组的1.13倍。结论以柠檬酸钠为助剂的微切变—助剂互作技术为提取柑橘皮色素提供了更安全可靠、省时方便的有效方法。
王雪晖[7]（2016）在《根皮苷酶法转化制备功能性黄色素研究》文中进行了进一步梳理色素是我们日常生活中常见的一种食品添加剂,其安全性一直备受人们关注,人工合成色素不断被曝光出安全性问题,使得安全、稳定的天然色素越来越受到人们的重视。本文主要通过采用体外转化法模拟苹果汁中黄色素的形成过程,研究建立了根皮苷酶促转化制备功能性黄色素的最适技术方法,研制出安全、稳定的功能性苹果黄色素粗品,通过体外抗氧化活性及稳定性研究明确其部分功能特性及应用范围,并对固定化酶法转化制备功能性黄色素进行初探。（1）建立了一种快速检测该酶促反应产物的检测方法,色谱条件为色谱柱:Waters ACQUITY UPLC BEH C18柱（2.1×100mm,Φ1.7μm）;流动相:甲醇和p H2.6的磷酸水溶液（40∶60）,等度洗脱;柱温:30℃;流速:0.3m L·min-1;检测器:紫外检测器;波长:287nm。该方法能够在5min内实现酶促反应产物的分离,得到酶促反应产物色谱图,在0.10-1.0mg/m L范围内线性良好,最低检测限为0.0279mg/L,定量限为0.1863mg/L,且精密度良好。加标回收率为98.69%,RSD是1.39%,检测结果准确可靠。（2）以根皮苷为原料,采用多酚氧化酶进行酶促转化制备功能性黄色素,得到反应最适温度为35℃,最适p H为6.5,反应进程研究表明根皮苷的转化在反应进行到90min时的转化率基本达到最大。酶反应动力学研究表明,在实验条件下,底物饱和的浓度为1mg/m L,动力学方程为:v=（0.0397S）/（3.3113+S）（3）根皮苷酶促反应液经乙酸乙酯4-5次萃取后可将未反应完全的根皮苷完全去除,得率为42.69%,经过甲醇溶解黄色素样品去除缓冲盐的得率为86.85%。（4）根皮苷及其酶促转化产物黄色素的抗氧化活性存在一定的差异,其中纯化后的黄色素对DPPH自由基的清除力显着强于根皮苷和纯化前的黄色素样品,但弱于抗坏血酸,对Fe3+的还原能力也强于根皮苷和纯化前黄色素样品,这两种方法得到的结果一致。黄色素为强极性水溶色素,在酸性和中性条件下较稳定,长时间高温和日照对苹果黄色素的稳定性有一定的影响,但是3h以内100℃的高温能保持稳定;色素对钠离子、钾离子、镁离子具有较高的稳定性,其余金属离子及蔗糖、双氧水在低浓度时表现出对黄色素溶液的稳定性。（5）海藻酸钠包埋法固定多酚氧化酶,得到I-PPO,在进行反应四次后酶活降低了51.6%,根皮苷转化率降低了24.35%。需进一步寻找更加牢固的固定化酶结构以增加反应次数,减缓酶活丧失的速度。
徐媛媛,陶冬萍,郭志华[8]（2016）在《正交试验法优化橘皮色素的超声提取工艺研究》文中指出[目的]为提高柑橘附加值,用正交试验法优化橘皮黄色素的提取工艺。[方法]采用单因素试验研究超声波乙醇提取橘皮黄色素的工艺,并采用正交试验确定最佳提取工艺。[结果]试验得出的橘皮色素超声提取的最佳工艺是:提取溶剂70%乙醇,料液比1∶10g/m L,提取温度80℃,超声时间为30 min,超声波功率为200 W。[结论]研究可为橘皮提取色素提供理论依据,为橘皮的综合开发利用提供参考。
张静[9]（2015）在《核桃青皮棕褐色色素的提取及应用研究》文中研究指明核桃青皮为未成熟核桃的外果皮,中药上将其称为青龙衣,具有一定的药用价值及功能性。大量的核桃青皮堆积不仅能造成环境污染,而且还可以造成资源的大量浪费。故本文以核桃青皮为原料,研究了两种保存方式下（晒干、冷藏）的核桃青皮棕褐色色素的提取工艺、理化性质、稳定性、生物活性及在食品上的应用。采用溶液浸提法对色素进行提取,通过研究选择稀碱溶液作为最佳浸提剂,对核桃青皮色素在紫外分光光度计下进行全波长扫描,确定了540 nm作为检测波长。通过单因素实验和正交试验对干燥和冷藏的核桃青皮色素进行了提取工艺优化：干燥核桃青皮色素最佳提取条件为提取液浓度为0.15 mol/L,料液比（m/V:g/mL）为1：100；冷藏核桃青皮色素最佳提取条件为提取剂的浓度为0.15 mol/L,料液比（m/V：g/mL）为5：100,其余条件两者均为温度为55℃提取30 min,浸提两次。对干燥和冷藏的核桃青皮色素理化性质及稳定性进行了研究,研究表明两种保存方式下提取的核桃青皮色素对温度、Na+、K+,还有常用的食品添加剂及还原剂稳定；但pH、光照、氧化剂及某些金属离子对两种保存方式下的色素影响均较明显。对两种保存方式下的核桃青皮色素色素进行成分分析得出：干燥的核桃青皮色素与冷藏核桃青皮色素中黄酮含量分别为0.28%±0.02%、0.26%±0.02%,多糖含量分别为11.43%±0.08%、3.67%±0.07%,粗蛋白含量为8.46%±0.03%、4.94%±0.03%,粗脂肪的含量分别为3.17%±0.03%、3.28%±0.02%,多酚含量分别为0.34%±0.01%、0.30%±0.01%,单宁含量分别为14.80%±0.05%、13.60%±0.04%,灰分分别为37.65%±0.09%、34.17%±0.08%。对两种保存方式下提取的核桃青皮色素进行了抑菌试验研究及抗氧化性的测定,研究得出干燥的核桃青皮色素对枯草芽孢杆菌与金黄色葡萄球菌有抑制效果,对大肠杆菌和沙门氏菌没有抑制效果,对四种真菌均没有抑制效果；冷藏的核桃青皮色素对四种细菌都有一定的抑制效果,对真菌无抑制效果；两种色素均具有还原力及对02-·、DPPH、OH具有一定的清除能力。最后对两种保存方式下的核桃青皮色素进行了毒性实验研究,得出小鼠的最大耐受量≥5000 mg·kg-1·bw,为实际无毒物质。通过上述对核桃青皮色素各方面的比较研究并基于色素无毒的情况下,研究了核桃青皮色素在果冻上的应用研究。
韩英,张守文[10]（2014）在《玉米黄色素的开发研究进展》文中认为随着我国经济的快速发,居民生活水平的提高,人们对食品的安全性的要求越来越高。天然色素与合成色素相比,它们具有无毒、无副作用,安全性高、色彩自然、一定的保健营养及药理作用的特点。玉米黄色素是从玉米皮或从玉米淀粉生产中的下脚料（玉米粗蛋白）中提取的类胡萝卜素类色素和隐黄素等利用价值较高的天然食用色素。玉米黄色素不仅是一种天然食着色剂,而且是生产保健食品添加剂,它作为天然色素已被欧美等许多国家批准为食用色素。概述了玉米黄色素的营养保健功能,阐述了玉米黄色素在国内外的研究进展以及玉米黄色素制备工艺流程的主要步骤和技术关键,并指出了玉米黄色素在发展中存在的问题以及未来的发展趋势。
二、食品添加剂桔皮黄色素的提取及其性质（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、食品添加剂桔皮黄色素的提取及其性质（论文提纲范文）
（1）鲜榨橙汁加工新工艺及副产物高值开发（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第1章 绪论 |
| 1.1 课题来源 |
| 1.2 橙子概述 |
| 1.2.1 橙子分类 |
| 1.2.2 橙子的营养价值与功效 |
| 1.2.3 橙子加工制品 |
| 1.3 橙汁生产与消费现状 |
| 1.4 食品稳定剂的研究进展 |
| 1.5 橙皮色素的研究进展 |
| 1.5.1 橙皮色素介绍 |
| 1.5.2 橙子色素种类 |
| 1.5.3 橙皮色素的提取方法 |
| 1.6 果胶的研究进展 |
| 1.6.1 果胶的概述 |
| 1.6.2 果胶的提取工艺 |
| 1.7 本论文的研究意义、主要研究内容 |
| 1.7.1 研究意义 |
| 1.7.2 主要研究内容 |
| 第2章 橙皮外果皮强化橙汁的研究 |
| 2.1 前言 |
| 2.2 实验材料与设备 |
| 2.2.1 主要实验材料与试剂 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 |
| 2.3 实验内容与方法 |
| 2.3.1 工艺流程 |
| 2.3.2 操作要点 |
| 2.3.3 试验设计 |
| 2.3.4 感官指标的测定 |
| 2.3.5 稳定剂的单一及复合配比试验 |
| 2.4 结果与分析 |
| 2.4.1 橙皮浆液料液水比试验结果 |
| 2.4.2 原料最佳比例单因素试验结果 |
| 2.4.3 最佳配方正交试验结果 |
| 2.4.4 验证试验 |
| 2.4.5 橙汁饮料产品质量要求 |
| 2.4.6 稳定剂的单一及复合配比试验结果与分析 |
| 2.5 本章小结 |
| 第3章 超声波辅助酸法提取橙皮果胶 |
| 3.1 前言 |
| 3.2 材料和仪器 |
| 3.2.1 试验材料 |
| 3.2.2 试验仪器 |
| 3.3 试验方法 |
| 3.3.1 工艺流程图 |
| 3.3.2 操作要点 |
| 3.3.3 不同酸水解对果胶提取的影响 |
| 3.3.4 单因素实验 |
| 3.3.5 正交试验 |
| 3.3.6 粗果胶的纯化 |
| 3.3.7 橙皮果胶理化性质的测定 |
| 3.4 试验结果分析 |
| 3.4.1 不同酸水解对果胶提取的影响 |
| 3.4.2 单因素试验 |
| 3.4.3 正交试验结果 |
| 3.5 本章小结 |
| 第4章 超声辅助提取橙皮色素 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 材料和仪器 |
| 4.2.1 材料 |
| 4.2.2 主要仪器与设备 |
| 4.3 试验方法 |
| 4.3.1 色素提取工艺流程 |
| 4.3.2 操作要点 |
| 4.3.3 橙皮色素定量分析 |
| 4.3.4 预实验及紫外全波长扫描 |
| 4.3.5 单因素试验 |
| 4.3.6 正交试验 |
| 4.3.7 橙皮色素稳定性试验研究 |
| 4.4 试验结果分析 |
| 4.4.1 橙皮色素最大吸收波长λmax的确定 |
| 4.4.2 单因素试验结果与分析 |
| 4.4.3 正交试验结果与分析 |
| 4.4.4 放大试验及结果分析 |
| 4.4.5 稳定性试验结果及分析 |
| 4.5 本章小结 |
| 第5章 结论与展望 |
| 5.1 结论 |
| 5.2 展望 |
| 参考文献 |
（2）柑橘皮β-胡萝卜素提取及微胶囊制备与应用研究（论文提纲范文）
| 中文摘要 |
| Abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 柑橘概述 |
| 1.2 柑橘皮利用现状 |
| 1.3 柑橘皮类胡萝卜素的研究 |
| 1.3.1 柑橘皮类胡萝卜素的类型、结构及理化性质 |
| 1.3.2 国内外柑橘皮类胡萝卜素的提取研究进展 |
| 1.3.3 β-胡萝卜素及其功能简介 |
| 1.3.4 柑橘皮β-胡萝卜素的提取研究进展 |
| 1.4 微胶囊概述 |
| 1.4.1 微胶囊简介 |
| 1.4.2 微胶囊的制备方法 |
| 1.4.3 微胶囊制备的影响因素 |
| 1.4.4 微胶囊在食品工业中的应用 |
| 1.5 微胶囊体外模拟消化的研究现状 |
| 1.6 研究目的及意义 |
| 1.7 研究内容和路线 |
| 1.7.1 研究内容 |
| 1.7.2 研究路线 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料与仪器 |
| 2.1.1 实验材料 |
| 2.1.2 实验仪器 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 超声辅助法提取β-胡萝卜素的工艺流程 |
| 2.2.2 β-胡萝卜素含量的测定 |
| 2.2.2.1 β-胡萝卜素标准曲线的绘制 |
| 2.2.2.2 橘皮中β-胡萝卜素总含量的测定 |
| 2.2.2.3 橘皮中β-胡萝卜素提取量的测定 |
| 2.2.3 β-胡萝卜素微胶囊化的制备工艺 |
| 2.2.4 微胶囊壁材体系的性质测定 |
| 2.2.5 β-胡萝卜素微胶囊化的工艺研究 |
| 2.2.5.1 不同壁材浓度对β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 2.2.5.2 不同均质速度对β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 2.2.5.3 不同固化剂添加量对β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 2.2.5.4 不同油相对β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 2.2.5.5 不同pH对 β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 2.2.5.6 设计响应面实验 |
| 2.2.6 β-胡萝卜素微胶囊产品的性质 |
| 2.2.6.1 β-胡萝卜素微胶囊化的表征测定 |
| 2.2.6.2 β-胡萝卜素微胶囊化的理化性质 |
| 2.2.7 β-胡萝卜素微胶囊的体外模拟利用及其在食品中的应用 |
| 2.2.7.1 β-胡萝卜素微胶囊在胃肠液中的利用率 |
| 2.2.7.2 β-胡萝卜素微胶囊对曲奇饼干的品质及质构的影响 |
| 2.3 实验数据处理 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 β-胡萝卜素提取的工艺优化结果 |
| 3.1.1 料液比对β-胡萝卜素提取的影响 |
| 3.1.2 温度对β-胡萝卜素提取的影响 |
| 3.1.3 提取时间对β-胡萝卜素提取的影响 |
| 3.1.4 正交实验结果 |
| 3.1.5 优化工艺条件下β-胡萝卜素的提取效果 |
| 3.2 β-胡萝卜素微胶囊制备工艺 |
| 3.2.1 壁材体系的性质测定结果 |
| 3.2.2 β-胡萝卜素微胶囊化的工艺研究结果与分析 |
| 3.2.2.1 不同壁材浓度对β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 3.2.2.2 不同均质速度对β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 3.2.2.3 不同固化剂添加量对β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 3.2.2.4 不同油相对β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 3.2.2.5 不同pH对 β-胡萝卜素微胶囊制备的影响 |
| 3.2.2.6 响应面实验结果分析 |
| 3.2.3 β-胡萝卜素微胶囊的品质分析 |
| 3.2.3.1 β-胡萝卜素微胶囊产品的表观特性 |
| 3.2.3.2 β-胡萝卜素微胶囊产品的物理特性 |
| 3.2.3.3 外界环境对β-胡萝卜素微胶囊稳定性的影响 |
| 3.3 β-胡萝卜素微胶囊在胃肠液中的性质 |
| 3.4 β-胡萝卜素微胶囊在曲奇饼干中的应用 |
| 4 讨论 |
| 5 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
（3）蛹虫草黄色素的分离鉴定、稳定性及培养条件研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| 第一章 前言 |
| 1.1 天然色素分类 |
| 1.1.1 花青素类色素 |
| 1.1.2 类胡萝卜素类色素 |
| 1.1.3 黄酮类色素 |
| 1.1.4 卟啉类色素 |
| 1.1.5 醌类色素 |
| 1.1.6 多酚类色素 |
| 1.1.7 其他类色素 |
| 1.2 常见天然色素的提取方法 |
| 1.2.1 溶剂提取法 |
| 1.2.2 加压溶剂萃取法 |
| 1.2.3 超声波辅助提取法 |
| 1.2.4 超临界流体提取法 |
| 1.2.5 微生物酶解法 |
| 1.3 黄色素的研究概况 |
| 1.4 蛹虫草的研究概况 |
| 1.4.1 蛹虫草在中国的分布 |
| 1.4.2 蛹虫草的栽培情况 |
| 1.4.3 蛹虫草的化学成分以及功效 |
| 1.5 本研究的目的和意义 |
| 第二章 蛹虫草黄色素的提取工艺优化 |
| 2.1 材料试剂与主要仪器 |
| 2.1.1 试验材料 |
| 2.1.2 试验试剂 |
| 2.1.3 主要试验仪器 |
| 2.2 试验方法 |
| 2.2.1 蛹虫草黄色素的提取工艺流程 |
| 2.2.2 提取溶剂的筛选 |
| 2.2.3 黄色素标曲的建立 |
| 2.2.4 蛹虫草黄色素提取率的计算 |
| 2.2.5 乙醇体积分数对黄色素提取率的影响 |
| 2.2.6 液料比对黄色素提取率的影响 |
| 2.2.7 超声波功率对黄色素提取率的影响 |
| 2.2.8 超声波处理时间对黄色素提取率的影响 |
| 2.2.9 提取次数对黄色素提取率的影响 |
| 2.2.10 提取工艺优化 |
| 2.2.11 数据处理 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 提取溶剂的筛选 |
| 2.3.2 乙醇体积分数对蛹虫草黄色素提取率的影响 |
| 2.3.3 超声波功率对蛹虫草黄色素提取率的影响 |
| 2.3.4 液料比对蛹虫草黄色素提取率的影响 |
| 2.3.5 超声波处理时间对蛹虫草黄色素提取率的影响 |
| 2.3.6 提取次数对蛹虫草黄色素提取率的影响 |
| 2.3.7 提取工艺优化结果分析 |
| 2.4 讨论 |
| 2.5 小结 |
| 第三章 蛹虫草黄色素的分离鉴定及稳定性研究 |
| 3.1 材料试剂与主要仪器 |
| 3.1.1 试验材料 |
| 3.1.2 试验试剂 |
| 3.1.3 主要试验仪器 |
| 3.2 试验方法 |
| 3.2.1 蛹虫草黄色素制备 |
| 3.2.2 蛹虫草黄色素的红外光谱分析 |
| 3.2.3 蛹虫草黄色素的组分分析 |
| 3.2.4 蛹虫草黄色素的质谱鉴定 |
| 3.2.5 YP-3 的分离纯化 |
| 3.2.6 YP-3 的紫外测定 |
| 3.2.7 YP-3 的质谱测定 |
| 3.2.8 温度对YP-3 稳定性影响 |
| 3.2.9 光照对YP-3 稳定性影响 |
| 3.2.10 不同pH对 YP-3 稳定性影响 |
| 3.2.11 金属离子对YP-3 稳定性影响 |
| 3.2.12 常见食品添加剂对YP-3 稳定性影响 |
| 3.2.13 数据处理 |
| 3.3 实验结果 |
| 3.3.1 蛹虫草黄色素的制备 |
| 3.3.2 蛹虫草黄色素的傅里叶红外光谱分析 |
| 3.3.3 蛹虫草黄色素的组分分析 |
| 3.3.4 蛹虫草黄色素的紫外分析 |
| 3.3.5 蛹虫草黄色素的质谱鉴定 |
| 3.3.6 YP-3 的分离纯化 |
| 3.3.7 YP-3 的紫外测定 |
| 3.3.8 YP-3 的质谱测定 |
| 3.3.9 不同温度对YP-3 稳定性影响 |
| 3.3.10 不同光照对YP-3 稳定性的影响 |
| 3.3.11 不同pH对 YP-3 稳定性的影响 |
| 3.3.12 常见金属离子对YP-3 稳定性影响 |
| 3.3.13 常见食品添加剂对YP-3 稳定性影响 |
| 3.4 讨论 |
| 3.5 小结 |
| 第四章 蛹虫草菌丝黄色素培养条件优化 |
| 4.1 材料试剂与主要仪器 |
| 4.1.1 供试菌株 |
| 4.1.2 试验试剂 |
| 4.1.3 主要试验仪器 |
| 4.2 试验方法 |
| 4.2.1 蛹虫草菌丝黄色素的制备 |
| 4.2.2 蛹虫草菌丝黄色素的分析与鉴定 |
| 4.2.3 不同碳源对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.2.4 不同氮源对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.2.5 不同光源对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.2.6 不同蔗糖的添加量对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.2.7 不同牛肉膏的添加量对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.2.8 不同紫光的光照强度对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.2.9 培养条件优化 |
| 4.2.10 试验指标测定 |
| 4.2.11 数据处理 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.3.1 蛹虫草菌丝黄色素的制备 |
| 4.3.2 蛹虫草菌丝黄色素的分析与鉴定 |
| 4.3.3 不同碳源对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.3.4 不同氮源对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.3.5 不同光源对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.3.6 不同蔗糖的添加量对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.3.7 不同牛肉膏的添加量对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.3.8 不同紫光的光照强度对蛹虫草菌丝黄色素产量的影响 |
| 4.3.9 培养条件优化结果与分析 |
| 4.4 讨论 |
| 4.5 小结 |
| 结论与展望 |
| 参考文献 |
| Abstract |
| 附录 |
| 致谢 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 |
（4）蛹虫草新型黄色素的分离纯化与结构鉴定及其性质功能研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| abstract |
| 1 前言 |
| 1.1 蛹虫草的研究进展 |
| 1.1.1 蛹虫草概述 |
| 1.1.2 蛹虫草活性成分与药用功能 |
| 1.1.3 蛹虫草的人工栽培 |
| 1.2 虫草色素的研究现状 |
| 1.2.1 蛹虫草黄色素的研究概述 |
| 1.2.2 其他虫草色素的研究概述 |
| 1.3 天然产物结构鉴定方法 |
| 1.3.1 液相色谱-质谱联用法 |
| 1.3.2 核磁共振波谱法 |
| 1.3.3 其他鉴定方法 |
| 1.4 研究目的与意义 |
| 1.5 技术路线 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 材料 |
| 2.1.1 实验菌种 |
| 2.1.2 主要仪器与设备 |
| 2.1.3 酶和试剂 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 蛹虫草黄色素分离纯化与提取条件的优化 |
| 2.2.2 蛹虫草纯化色素的结构鉴定 |
| 2.2.3 蛹虫草纯化色素稳定性研究 |
| 2.2.4 蛹虫草纯化色素对DPPH自由基的清除作用 |
| 2.2.5 蛹虫草纯化色素对HSF细胞增殖的影响 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 蛹虫草黄色素提取溶剂的比较 |
| 3.2 不同菌株黄色素粗提液的HPLC分离 |
| 3.3 蛹虫草黄色素粗提液的HPLC分离与纯化制备 |
| 3.4 CMPP-2标准曲线的绘制及提取量的计算 |
| 3.5 单因素实验结果 |
| 3.5.1 甲醇、乙醇浓度对CMPP-2提取量的影响 |
| 3.5.2 提取温度对CMPP-2提取量的影响 |
| 3.5.3 料液比对CMPP-2提取量的影响 |
| 3.5.4 提取时间对CMPP-2提取量的影响 |
| 3.6 响应面实验结果 |
| 3.6.1 响应面试验结果与回归方程拟合 |
| 3.6.2 响应面模型方差及可行度分析 |
| 3.6.3 交互作用分析结果 |
| 3.6.4 工艺参数优化验证结果 |
| 3.7 蛹虫草CMPP-2的结构鉴定 |
| 3.7.1 CMPP-2全波长扫描结果 |
| 3.7.2 CMPP-2 HRMS结果 |
| 3.7.3 CMPP-2 FTIR扫描结果 |
| 3.7.4 CMPP-2 NMR扫描结果 |
| 3.8 蛹虫草虫草烯的稳定性研究 |
| 3.8.1 不同光照与空气对虫草烯稳定性的影响 |
| 3.8.2 不同温度对虫草烯稳定性的影响 |
| 3.8.3 不同pH值对虫草烯稳定性的影响 |
| 3.8.4 不同金属离子对虫草烯稳定性的影响 |
| 3.8.5 增味剂对虫草烯稳定性的影响 |
| 3.8.6 酸味剂对虫草烯稳定性的影响 |
| 3.8.7 防腐剂对虫草烯稳定性的影响 |
| 3.8.8 氧化还原剂对虫草烯稳定性的影响 |
| 3.9 蛹虫草虫草烯清除DPPH自由基的能力 |
| 3.10 虫草烯对HSF细胞的作用 |
| 3.10.1 虫草烯对正常HSF细胞的毒性作用 |
| 3.10.2 HSF细胞衰老模型的构建 |
| 3.10.3 虫草烯对衰老HSF细胞的修复作用 |
| 3.10.4 虫草烯对衰老HSF细胞抗氧化酶活性的影响 |
| 4 讨论与结论 |
| 4.1 讨论 |
| 4.1.1 蛹虫草黄色素快速分离纯化方法的探讨 |
| 4.1.2 蛹虫草黄色素种类的探讨 |
| 4.1.3 黄色素在蛹虫草中发挥的作用 |
| 4.1.4 蛹虫草类胡萝卜素研究现状探讨 |
| 4.2 结论 |
| 4.3 创新点 |
| 致谢 |
| 参考文献 |
| 附录 A |
| 附录 B |
（5）玉米皮活性成分提取工艺研究进展（论文提纲范文）
| 1 膳食纤维提取工艺研究 |
| 1.1 化学提取法 |
| 1.2 生物酶法 |
| 2 多糖提取工艺研究 |
| 2.1 浸提法 |
| 2.2 酶提法 |
| 2.3 其他物理技术辅助法 |
| 3 黄色素提取工艺研究 |
| 3.1 有机溶剂浸提工艺 |
| 3.2 微波辅助提取工艺 |
| 3.3 超声辅助提取工艺 |
| 4 L-阿拉伯糖提取工艺研究 |
| 4.1 酸水解法 |
| 4.2 微生物法 |
| 5 阿魏酸提取工艺研究 |
| 5.1 碱解提取工艺 |
| 5.2 酶解提取工艺 |
| 6 阿魏酰低聚糖提取制备工艺研究 |
| 6.1 酶水解提取制备工艺 |
| 6.2 生物发酵制备工艺 |
| 7 玉米皮油提取工艺研究 |
| 8 结论与展望 |
（6）微切变-助剂互作技术辅助提取柑橘皮黄色素的工艺研究（论文提纲范文）
| 1 引言 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 材料与试剂 |
| 2.2 主要仪器设备 |
| 2.3 试验方法 |
| 2.3.1 粗粉的制备 |
| 2.3.2 微切变—助剂互作技术处理 |
| 2.3.3 橘皮黄色素提取及测定 |
| 2.3.4 单因素试验设计 |
| 2.3.5 正交试验设计 |
| 2.3.6 验证试验的设计 |
| 2.3.7 统计分析 |
| 3 结果与分析 |
| 3.1 单因素试验结果 |
| 3.1.1 柠檬酸钠添加量对黄色素提取效果的影响 |
| 3.1.2 乙醇浓度对黄色素提取效果的影响 |
| 3.1.3 提取时间对黄色素提取效果的影响 |
| 3.1.4 提取温度对黄色素提取效果的影响 |
| 3.2 正交试验结果 |
| 3.3 验证实验 |
| 3.3.1 正交验证试验 |
| 3.3.2 不同提取方法对柑橘皮黄色素提取效果的比较 |
| 4 结论 |
（7）根皮苷酶法转化制备功能性黄色素研究（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| 第一章 绪论 |
| 1.1 苹果根皮苷和黄色素概述 |
| 1.1.1 苹果根皮苷 |
| 1.1.1.1 根皮苷分离纯化方法 |
| 1.1.1.2 根皮苷的定性定量检测方法 |
| 1.1.2 黄色素 |
| 1.1.2.1 食用色素概况 |
| 1.1.2.2 天然色素的提取分离 |
| 1.1.2.3 苹果根皮苷酶促转化制备黄色素 |
| 1.2 超高效液相色谱 |
| 1.2.1 超高效液相的应用 |
| 1.2.2 超高效液相色谱与其他技术的联用 |
| 1.3 固定化酶技术 |
| 1.3.1 固定化酶的固定方法 |
| 1.3.1.1 吸附法 |
| 1.3.1.2 包埋法 |
| 1.3.1.3 交联法 |
| 1.3.1.4 共价法 |
| 1.3.1.5 新型固定化技术 |
| 1.3.2 固定化酶技术的应用 |
| 1.4 研究目的与意义 |
| 1.5 本论文的主要研究内容 |
| 第二章 根皮苷酶促转化制备功能性黄色素检测方法的建立及动力学研究 |
| 2.1 前言 |
| 2.2 材料与方法 |
| 2.2.1 实验材料和试剂 |
| 2.2.2 主要仪器设备 |
| 2.2.3 实验方法 |
| 2.2.3.1 紫外-可见光谱检测 |
| 2.2.3.2 UPLC检测色谱条件 |
| 2.2.3.3 标准溶液的配制 |
| 2.2.3.4 酶促反应反应液的制备 |
| 2.2.3.5 标准曲线的建立 |
| 2.2.3.6 最低检测限和定量限的测定 |
| 2.2.3.7 精密度实验 |
| 2.2.3.8 加标回收率的测定 |
| 2.2.3.9 酶促反应酶源的选择 |
| 2.2.3.10 多酚氧化酶酶活力的测定 |
| 2.2.3.11 酶促反应最适温度 |
| 2.2.3.12 酶促反应最适p H |
| 2.2.3.13 酶促反应进程的研究 |
| 2.2.3.14 酶反应动力学参数Km和Vmax的测定 |
| 2.3 结果与分析 |
| 2.3.1 紫外-可见光谱检测 |
| 2.3.2 流动相及比例的确定 |
| 2.3.3 标准曲线 |
| 2.3.4 最低检测限和定量限的测定 |
| 2.3.5 精密度实验 |
| 2.3.6 加标回收率的测定 |
| 2.3.7 酶促反应酶源的选择 |
| 2.3.8 酶促反应最适温度 |
| 2.3.9 酶促反应最适p H |
| 2.3.10 酶促反应进程的研究 |
| 2.3.11 酶反应动力学参数Km和Vmax的测定 |
| 2.4 小结 |
| 第三章 根皮苷酶促转化制备产物的纯化及其体外抗氧化活性研究 |
| 3.1 前言 |
| 3.2 材料与方法 |
| 3.2.1 材料与试剂 |
| 3.2.2 主要仪器设备 |
| 3.2.3 实验方法 |
| 3.2.3.1 制备黄色素方法 |
| 3.2.3.2 除未反应完全的根皮苷 |
| 3.2.3.3 除反应液中含有的缓冲盐 |
| 3.2.3.4 对DPPH自由基的清除作用 |
| 3.2.3.5 对ABTS自由基的清除作用 |
| 3.2.3.6 对铁还原能力（FRAP）的测定 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 除未反应完全的根皮苷 |
| 3.3.2 除反应液中含有的缓冲盐 |
| 3.3.3 对DPPH自由基的清除作用 |
| 3.3.4 对ABTS自由基的清除作用 |
| 3.3.5 对铁还原能力（FRAP）的测定 |
| 3.4 小结 |
| 第四章 黄色素稳定性研究 |
| 4.1 前言 |
| 4.2 材料与方法 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 |
| 4.2.2 主要仪器设备 |
| 4.2.3 实验方法 |
| 4.2.3.1 黄色素的溶解性 |
| 4.2.3.2 光对黄色素稳定性的影响 |
| 4.2.3.3 热对黄色素稳定性的影响 |
| 4.2.3.4 p H值对色素稳定性的影响 |
| 4.2.3.5 食品添加剂对黄色素稳定性的影响 |
| 4.2.3.6 氧化还原剂对黄色素稳定性的影响 |
| 4.2.3.7 金属离子对黄色素稳定性的影响 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.3.1 黄色素的溶解性 |
| 4.3.2 光对黄色素稳定性的影响 |
| 4.3.3 热对黄色素稳定性的影响 |
| 4.3.4 p H值对色素稳定性的影响 |
| 4.3.5 食品添加剂对黄色素稳定性的影响 |
| 4.3.6 氧化还原剂对黄色素稳定性的影响 |
| 4.3.7 金属离子对黄色素稳定性的影响 |
| 4.4 小结 |
| 第五章 固定化酶促转化制备功能性黄色素初探 |
| 5.1 前言 |
| 5.2 材料与方法 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 |
| 5.2.2 主要仪器设备 |
| 5.2.3 实验方法 |
| 5.2.3.1 海藻酸钠包埋制备I-PPO |
| 5.2.3.2 I-PPO酶活力的测定 |
| 5.2.3.3 固定化酶I-PPO酶促转化制备功能性黄色素重复使用稳定性 |
| 5.3 结果与分析 |
| 5.4 小结 |
| 第六章 结论与展望 |
| 6.1 全文总结 |
| 6.2 创新点及工作展望 |
| 参考文献 |
| Abstract |
（8）正交试验法优化橘皮色素的超声提取工艺研究（论文提纲范文）
| 1 材料与方法 |
| 1. 1 材料 |
| 1.1.1供试原料。 |
| 1.1.2主要仪器。 |
| 1.1.3主要试剂。 |
| 1. 2 方法 |
| 1.2.1最大吸收波长的确定。 |
| 1.2.2最佳提取剂的选择。 |
| 1.2.3橘皮黄色素提取单因素试验。 |
| 1.2.4正交试验。 |
| 2 结果与分析 |
| 2.1确定最高吸收峰 |
| 2.2提取溶剂的确定 |
| 2.3确定最佳提取剂浓度 |
| 2.4确定最佳料液比 |
| 2.5最佳提取温度 |
| 2.6超声时间的确定 |
| 2.7确定最佳提取超声波功率 |
| 2.8确定最佳提取条件 |
| 3 结论 |
（9）核桃青皮棕褐色色素的提取及应用研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 前言 |
| 1.1 核桃青皮概述 |
| 1.1.1 核桃青皮的定义及分布 |
| 1.1.2 核桃青皮中化学成分研究 |
| 1.1.3 核桃青皮的综合应用 |
| 1.1.4 核桃青皮的研究进展及展望 |
| 1.2 食用色素的概述 |
| 1.2.1 食用色素的定义 |
| 1.2.2 食用色素的分类 |
| 1.2.3 天然色素的提取方法 |
| 1.2.4 天然色素常用的提纯方法 |
| 1.2.5 天然色素的发展前景 |
| 1.3 本课题的研究目的、意义和主要内容 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.1.1 核桃青皮 |
| 2.1.2 主要试剂与药品 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 |
| 2.1.4 实验动物 |
| 2.2 核桃青皮棕褐色色素浸提剂的选择 |
| 2.2.1 干燥核桃青皮提取棕褐色色素浸提剂的选择 |
| 2.2.2 冷藏核桃青皮提取棕褐色色素浸提剂的选择 |
| 2.3 核桃青皮色素的提取工艺流程 |
| 2.4 核桃青皮色素提取工艺的优化 |
| 2.4.1 核桃青皮色素浸提工艺的单因素实验 |
| 2.4.2 核桃青皮色素提取的正交试验 |
| 2.5 核桃青皮棕褐色色素的主要物理化学性质 |
| 2.5.1 色素的外观、颜色及溶解性 |
| 2.5.2 核桃青皮色素的光谱特性 |
| 2.6 干燥和冷藏核桃青皮的稳定性 |
| 2.6.1 pH对两种色素稳定性的影响 |
| 2.6.2 色素溶液的热稳定性 |
| 2.6.3 光照对核桃青皮色素稳定性的影响 |
| 2.6.4 金属离子对色素稳定性的影响 |
| 2.7 食品添加剂对色素稳定性的影响 |
| 2.8 氧化剂、还原剂对色素稳定性的影响 |
| 2.8.1 双氧水对色素稳定性的影响 |
| 2.8.2 亚硫酸钠对色素稳定性的影响 |
| 2.9 干燥和冷藏的核桃青皮色素的粗成分的分析 |
| 2.9.1 核桃青皮色素中黄酮含量的测定 |
| 2.9.2 核桃青皮色素中多糖含量的测定 |
| 2.9.3 核桃青皮色素中粗蛋白含量的测定 |
| 2.9.4 核桃青皮色素中粗脂肪的测定 |
| 2.9.5 核桃青皮色素中多酚含量的测定 |
| 2.9.6 核桃青皮色素中单宁含量的测定 |
| 2.9.7 核桃青皮色素中粗灰分含量的测定 |
| 2.9.8 核桃青皮色素中粗纤维的测定 |
| 2.10 核桃青皮色素的抑菌活性的研究 |
| 2.10.1 菌种的培养条件 |
| 2.10.2 菌种的活化 |
| 2.10.3 培养基的配制 |
| 2.10.4 菌悬液及药敏纸片的制备 |
| 2.10.5 核桃青皮色素的抑菌实验 |
| 2.11 核桃青皮色素的抗氧化性的研究 |
| 2.11.1 两种核桃青皮色素的还原力的测定 |
| 2.11.2 对超氧阴离子自由基(O_2~-)的清除能力 |
| 2.11.3 对二苯代苦味酰基自由基(DPPH·)的清除能力 |
| 2.11.4 对羟自由基(·OH)的清除能力 |
| 2.12 核桃青皮色素的急性毒性研究 |
| 2.12.1 小鼠给色素给予量预实验的研究 |
| 2.12.2 小鼠的急性毒性实验 |
| 2.12.3 组织病理学的观察 |
| 2.13 核桃青皮色素在食品上的应用—果冻的研发 |
| 2.13.1 果冻冻制作工艺流程 |
| 2.13.2 果冻配方优化正交试验 |
| 2.13.3 产品质量控制 |
| 3 结果与讨论 |
| 3.1 核桃青皮棕褐色色素浸提剂的选择 |
| 3.1.1 干燥核桃青皮浸提剂的选择 |
| 3.1.2 冷藏核桃青皮浸提剂的选择 |
| 3.2 核桃青皮提取工艺的优化 |
| 3.2.1 核桃青皮提取工艺的单因素实验 |
| 3.2.2 核桃青皮色素提取的正交试验 |
| 3.3 核桃青皮棕褐色色素的主要物理化学性质 |
| 3.3.1 色素的外观、颜色及溶解性 |
| 3.3.2 色素的光谱特性 |
| 3.4 干燥和冷藏核桃青皮色素的稳定性 |
| 3.4.1 pH对色素稳定性的影响 |
| 3.4.2 色素溶液的热稳定性 |
| 3.4.3 光照对核桃青皮色素的影响 |
| 3.4.4 金属离子对色素稳定性的影响 |
| 3.4.5 常用食品添加剂对色素稳定性的影响 |
| 3.4.6 氧化剂与还原剂对色素稳定性的影响 |
| 3.5 核桃青皮色素粗成分的分析 |
| 3.5.1 核桃青皮色素中黄酮含量的测定 |
| 3.5.2 核桃青皮色素中多糖含量的测定 |
| 3.5.3 核桃青皮色素中粗蛋白含量的测定 |
| 3.5.4 核桃青皮色素中粗脂肪含量的测定 |
| 3.5.5 核桃青皮色素中多酚含量的测定 |
| 3.5.6 核桃青皮色素中单宁含量的测定 |
| 3.5.7 核桃青皮色素中灰分含量的测定 |
| 3.5.8 核桃青皮色素中粗纤维含量的测定 |
| 3.5.9 核桃青皮色素中成分汇总 |
| 3.6 核桃青皮色素的抑菌实验 |
| 3.6.1 核桃青皮色素对细菌的抑制性实验 |
| 3.6.2 核桃青皮色素对真菌的抑制性实验 |
| 3.7 核桃青皮色素的抗氧化性的研究 |
| 3.7.1 核桃青皮色素还原力的测定 |
| 3.7.2 对超氧阴离子自由基(O_2-)的清除能力 |
| 3.7.3 对二苯代苦味酰基自由基(DPPH·)的清除能力 |
| 3.7.4 对羟自由基(·OH)的清除能力 |
| 3.8 核桃青皮色素的急性毒性实验 |
| 3.8.1 小鼠日常表现 |
| 3.8.2 急性毒性实验期间各组小鼠体重变化数据汇总 |
| 3.8.3 小鼠剖检及脏器观察 |
| 3.8.4 急性毒性实验小鼠脏器系数 |
| 3.8.5 小鼠肝、肾组织切片 |
| 3.9 核桃青皮色素果冻的研制 |
| 3.9.1 核桃青皮色素果冻内容物的配方优化单因素实验 |
| 3.9.2 核桃青皮色素果冻内容物的配方优化正交实验 |
| 3.9.3 产品质量分析及各项标准的制定 |
| 3.9.4 产品质量分析 |
| 4 结论 |
| 5 展望 |
| 6 参考文献 |
| 7 致谢 |
（10）玉米黄色素的开发研究进展（论文提纲范文）
| 1 色素 |
| 2 玉米黄色素的功能 |
| 2.1 玉米黄色素的着色作用 |
| 2.2 玉米黄色素的抗氧化作用 |
| 2.3 玉米黄色素的视觉保护作用 |
| 3 玉米黄色素国内外的研究进展情况 |
| 3.1 国外的研究进展 |
| 3.2 我国内地的研究进展 |
| 4 玉米黄色素的提取工艺研究进展情况 |
| 4.1 提取工艺 |
| 4.2 测定波长的选择 |
| 4.3 标准曲线的制备[15] |
| 4.4 工艺技术关键 |
| 4.4.1 水解过程 |
| 4.4.2 提取过程 |
| 4.4.3 干燥技术 |
| 5 玉米黄色素在研发过程中需要解决的问题及前景 |
| 5.1 问题 |
| 5.2 深入研究和发展前景 |
四、食品添加剂桔皮黄色素的提取及其性质（论文参考文献）
- [1]鲜榨橙汁加工新工艺及副产物高值开发[D]. 周艳蕊. 合肥工业大学, 2020(02)
- [2]柑橘皮β-胡萝卜素提取及微胶囊制备与应用研究[D]. 郁兴娜. 山东农业大学, 2020
- [3]蛹虫草黄色素的分离鉴定、稳定性及培养条件研究[D]. 张明亮. 山西农业大学, 2019
- [4]蛹虫草新型黄色素的分离纯化与结构鉴定及其性质功能研究[D]. 唐鸿标. 华南农业大学, 2019
- [5]玉米皮活性成分提取工艺研究进展[J]. 赵二劳,王明华,高子怡,赵三虎. 食品与机械, 2017(12)
- [6]微切变-助剂互作技术辅助提取柑橘皮黄色素的工艺研究[J]. 吴菲菲,陈琼,赵良忠,李化强,徐永平,李淑英. 食品安全质量检测学报, 2017(07)
- [7]根皮苷酶法转化制备功能性黄色素研究[D]. 王雪晖. 河南农业大学, 2016(05)
- [8]正交试验法优化橘皮色素的超声提取工艺研究[J]. 徐媛媛,陶冬萍,郭志华. 安徽农业科学, 2016(02)
- [9]核桃青皮棕褐色色素的提取及应用研究[D]. 张静. 天津科技大学, 2015(02)
- [10]玉米黄色素的开发研究进展[J]. 韩英,张守文. 中国食品添加剂, 2014(06)